Determinação de parâmetros experimentais e de análise de medidas de rigidez e adesão celular por microscopia de força atômica

• Ano de defesa: 2026
• Autor(a) principal: Biffe, Cleyton Alexandre
• Tipo de documento: Dissertação
• Tipo de acesso: Acesso aberto
• Idioma: por
• Instituição de defesa: Biblioteca Digitais de Teses e Dissertacoes da USP; Universidade de São Paulo; Faculdade de Medicina
• Palavras-chave em Português: Adesão celular; Fenômenos Biomecânicos; Microscopia de força atômica; Atomic Force Microscopy; Biomechanical Phenomena; Cell Adhesion
• Link de acesso: https://teses.usp.br/teses/disponiveis/5/5160/tde-30042026-155236/

A rigidez celular é um parâmetro importante para compreender processos fisiológicos e patológicos, uma vez que alterações nas propriedades mecânicas das células estão associadas a fenômenos como diferenciação, migração, e resposta a estímulos extracelulares. A Microscopia de Força Atômica (AFM) destaca-se como uma ferramenta precisa para a quantificação dessas propriedades em escala nanométrica, permitindo a investigação detalhada da mecânica celular em condições próximas às fisiológicas. Neste trabalho, foi realizada uma investigação sistemática como o objetivo de determinar parâmetros experimentais adequados para realizar medidas de rigidez e adesão celular por AFM. O estudo buscou aprofundar a compreensão das propriedades biomecânicas de células vivas e evidenciar a importância do desenvolvimento e da aplicação de métodos precisos de caracterização nanomecânica. As medidas de AFM foram realizadas em células musculares lisas de rato mantidas em meio líquido, sob temperatura controlada. Curvas força-distância foram obtidas para determinação de rigidez e adesão celular considerando variáveis experimentais, como o tipo e a geometria das sondas comerciais, a constante de mola, o modo de operação, os parâmetros de aquisição e as estratégias de processamento dos dados. A rigidez avaliada em diferentes regiões celulares (núcleo, citoplasma e região pericelular), permitiu identificar a heterogeneidade mecânica intracelular e alterações induzidas por estímulos farmacológicos. Nas medidas de adesão, o uso de sondas funcionalizadas com fibronectina e a variação dos tempos de contato revelaram comportamentos dinâmicos dependentes do tempo, bem como diferenças significativas entre diferentes tipos celulares. Os resultados obtidos demonstram a relevância das abordagens empregadas na caracterização das propriedades nanomecânicas de células vivas e ressaltam a importância da padronização experimental e analítica nesse tipo de estudo. Ao propor o AFM como uma ferramenta robusta para o estudo de processos biomecânicos celulares em diferentes condições fisiopatológicas, este trabalho amplia as perspectivas de compreensão da mecânica celular e suas implicações em contextos clínicos e terapêuticos.