Aplicação de Técnicas Moleculares para Avaliação da Carga Parasitária de Amostras de Insetos Triatomíneos Infectados por Trypanosoma cruzi

Detalhes bibliográficos
Ano de defesa: 2016
Autor(a) principal: Araujo, Paula Finamore
Orientador(a): Moreira, Otacílio da Cruz, Brito, Constança Felícia De Paoli de Carvalho
Banca de defesa: Não Informado pela instituição
Tipo de documento: Dissertação
Tipo de acesso: Acesso aberto
Idioma: por
Instituição de defesa: Não Informado pela instituição
Programa de Pós-Graduação: Não Informado pela instituição
Departamento: Não Informado pela instituição
País: Não Informado pela instituição
Link de acesso: https://arca.fiocruz.br/handle/icict/18174
Resumo: A doença de Chagas constitui a quarta mais importante doença tropical, suplantada somente pela malária, tuberculose e esquistossomose. A análise por microscopia é o método clássico para descrição de infecção natural de triatomíneos por Trypanosoma cruzi e apresenta algumas limitações como baixa sensibilidade e reprodutibilidade, dificuldade de exame nos diferentes estágios evolutivos dos vetores, necessidade da análise em insetos frescos, além de ser um procedimento extremamente laborioso. Nesse contexto, a utilização da PCR em Tempo real (qPCR) para o diagnóstico de T. cruzi apresenta várias vantagens, como maior sensibilidade, rapidez e reprodutibilidade, possibilitando investigar o desenvolvimento do parasito no vetor. Neste trabalho, foi desenvolvido um ensaio multiplex de qPCR pelo sistema TaqMan com alvos para o gene correspondente à região 12S do RNA ribossomal de triatomíneos e para o DNA nuclear satélite de T. cruzi, capaz de estimar a carga parasitária em amostras de insetos positivas para infecção por T. cruzi. Além disso, padronizamos uma qPCR com transcrição reversa (RT-qPCR), com alvo para o gene T. cruzi GAPDH, capaz de quantificar parasitos viáveis em amostras de triatomíneos. A reação de qPCR multiplex apresentou uma detecção linear para T. cruzi na faixa de 105 a 0,5 equivalentes de parasitos e para triatomíneo na faixa de 3 a 1,5 x 10-4 equivalentes de triatomíneo. Além disso, foi possível determinar um Limite de Detecção em 0,41 eq. Parasitos. Para validação clínica da PCR quantitativa, 13 amostras de triatomíneos coletados em campo, positivas para infecção por T. cruzi, foram quantificadas e apresentaram cargas variadas, cuja mediana foi de 105 eq. parasito/eq. triatomíneo Posteriormente, para acompanhar o desenvolvimento do T. cruzi (Dm28c) em Rhodnius prolixus, ao longo de todo o trato digestivo e das suas diferentes porções, RNA e DNA total foram extraídos de insetos em diferentes períodos após a alimentação com sangue contendo T. cruzi. Foi possível observar que, a partir de 9 dias pós-alimentação dos insetos, ocorre uma diminuição da quantidade de parasitas viáveis (detectados por RNAm) em todo o trato digestivo do vetor, que não é acompanhada pela diminuição da quantidade de parasitos totais (detectados por DNA). Sendo que, avaliando separadamente o conteúdo intestinal, esta diminuição ocorre principalmente na porção anterior do intestino médio do inseto. Em paralelo, foi observado através de uma RT-qPCR com alvo no gene TcS5, altamente expresso nas formas tripomastigotas, detecção destas formas apenas na quarta semana após alimentação. Os ensaios de qPCR e RT-qPCR desenvolvidos neste estudo contribuirão para para determinar a taxa de infecção de triatomíneos silvestres, além de auxiliar em estudos sobre competência vetorial de triatomíneos e a incidência da doença de Chagas
id CRUZ_53cdbf1136dbf87649220ac32cf3cd76
oai_identifier_str oai:arca.fiocruz.br:icict/18174
network_acronym_str CRUZ
network_name_str Repositório Institucional da Fiocruz (ARCA)
repository_id_str
spelling Araujo, Paula FinamoreBruno, Rafaela VieiraGonzalez, Marcelo SalabertRoque, André Luiz RodriguesGomes, Suzete Araujo OliveiraWaghabi, Mariana CaldasWaniek, Peter JosefMoreira, Otacílio da CruzBrito, Constança Felícia De Paoli de Carvalho2017-03-27T14:52:30Z2017-03-27T14:52:30Z2016ARAUJO, P. F Aplicação de Técnicas Moleculares para Avaliação da Carga Parasitária de Amostras de Insetos Triatomíneos Infectados por Trypanosoma Cruzi. 2016. 77f. Dissertação (Mestrado em Biologia Celular e Molecular) - Fundação Oswaldo Cruz, Instituto Oswaldo Cruz, Rio de janeiro, RJ, 2016https://arca.fiocruz.br/handle/icict/18174A doença de Chagas constitui a quarta mais importante doença tropical, suplantada somente pela malária, tuberculose e esquistossomose. A análise por microscopia é o método clássico para descrição de infecção natural de triatomíneos por Trypanosoma cruzi e apresenta algumas limitações como baixa sensibilidade e reprodutibilidade, dificuldade de exame nos diferentes estágios evolutivos dos vetores, necessidade da análise em insetos frescos, além de ser um procedimento extremamente laborioso. Nesse contexto, a utilização da PCR em Tempo real (qPCR) para o diagnóstico de T. cruzi apresenta várias vantagens, como maior sensibilidade, rapidez e reprodutibilidade, possibilitando investigar o desenvolvimento do parasito no vetor. Neste trabalho, foi desenvolvido um ensaio multiplex de qPCR pelo sistema TaqMan com alvos para o gene correspondente à região 12S do RNA ribossomal de triatomíneos e para o DNA nuclear satélite de T. cruzi, capaz de estimar a carga parasitária em amostras de insetos positivas para infecção por T. cruzi. Além disso, padronizamos uma qPCR com transcrição reversa (RT-qPCR), com alvo para o gene T. cruzi GAPDH, capaz de quantificar parasitos viáveis em amostras de triatomíneos. A reação de qPCR multiplex apresentou uma detecção linear para T. cruzi na faixa de 105 a 0,5 equivalentes de parasitos e para triatomíneo na faixa de 3 a 1,5 x 10-4 equivalentes de triatomíneo. Além disso, foi possível determinar um Limite de Detecção em 0,41 eq. Parasitos. Para validação clínica da PCR quantitativa, 13 amostras de triatomíneos coletados em campo, positivas para infecção por T. cruzi, foram quantificadas e apresentaram cargas variadas, cuja mediana foi de 105 eq. parasito/eq. triatomíneo Posteriormente, para acompanhar o desenvolvimento do T. cruzi (Dm28c) em Rhodnius prolixus, ao longo de todo o trato digestivo e das suas diferentes porções, RNA e DNA total foram extraídos de insetos em diferentes períodos após a alimentação com sangue contendo T. cruzi. Foi possível observar que, a partir de 9 dias pós-alimentação dos insetos, ocorre uma diminuição da quantidade de parasitas viáveis (detectados por RNAm) em todo o trato digestivo do vetor, que não é acompanhada pela diminuição da quantidade de parasitos totais (detectados por DNA). Sendo que, avaliando separadamente o conteúdo intestinal, esta diminuição ocorre principalmente na porção anterior do intestino médio do inseto. Em paralelo, foi observado através de uma RT-qPCR com alvo no gene TcS5, altamente expresso nas formas tripomastigotas, detecção destas formas apenas na quarta semana após alimentação. Os ensaios de qPCR e RT-qPCR desenvolvidos neste estudo contribuirão para para determinar a taxa de infecção de triatomíneos silvestres, além de auxiliar em estudos sobre competência vetorial de triatomíneos e a incidência da doença de ChagasChagas disease constitutes the fourth most important tropical disease, supplanted only by malaria, tuberculosis, and schistosomiasis. Microscopical examination is a classic method to describe the natural infection of triatomines by Trypanosoma cruzi, but it presents some limitations. Therefore, the development of molecular assays to quantify with high sensitivity and precision the parasite load in the triatomines is important to further study the vectorial competence of these insects. In this context, this study aims to develop a quantitative Real Time PCR (qPCR) assay to monitor the parasite load in triatomine samples, which is capable to detect and quantify absolute levels of T. cruzi in triatomine samples, differentiating total parasites from viable parasites by DNA and mRNA detection with high sensitivity, specificity and reproducibility, in order to investigate the development of distinct strains of T. cruzi in insect vectors. In this work, we developed a qPCR TaqMan multiplex assay targeting the T. cruzi nuclear satellite DNA and the triatomines 12S rRNA gene, wich is capable to detect and quantify distinct strains of the parasite and species of triatomines. Also, to quantify only viable parasites, a RT-qPCR was developed, targeting the T. cruzi GAPDH and triatomines 12S rRNA genes. Our multiplex qPCR reaction presented a linearity ranging from 105 to 0.5 parasite equivalents, for the T. cruzi target, and from 3 to 0.00015 triatomine equivalents, for the vector insect target. It was also possible to determine that qPCR Limit of Detection (LOD) was 0,41 parasite equivalents To validate the assay, 13 samples from field triatomines, positive for T. cruzi infection, were evaluated by qPCR, with variations in parasite load. Furthermore, to follow T. cruzi (Dm28c) development in Rhodnius prolixus total digestive tract and its different portions, total DNA and RNA were extracted from insect samples under increasing periods after feeding with blood containing T. cruzi. Nine days after feeding, it was possible to observe a time-dependent decreasing on the viable parasite quantity during the time course of the experiment, in which this decreasing occurs mainly in the anterior midgut portion. At the same time, was also observed in a RT-qPCR targeting TcS5 gene, highly expressed in trypomastigotes forms, besides the development of trypomastigotes forms inside the insect vector four weeks after feeding. The qPCR and RT-qPCR assays developed in this study are suitable to determine the infection rate of sylvatic triatomines and they can contribute to understand the vectorial competence of triatomines as well as the incidence of Chagas diseaseFundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Programa de Pós-Graduação em Biologia Celular e Molecular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.porAplicação de Técnicas Moleculares para Avaliação da Carga Parasitária de Amostras de Insetos Triatomíneos Infectados por Trypanosoma cruziinfo:eu-repo/semantics/publishedVersioninfo:eu-repo/semantics/masterThesis2016-07-11Instituto Oswaldo CruzFundação Oswaldo CruzMestrado AcadêmicoRio de Janeiro/RJPrograma Pós-Graduação em Biologia Celular e MolecularDoença de ChagasRhodniusReação em Cadeia da Polimerase em Tempo RealTrypanosoma cruziinfo:eu-repo/semantics/openAccessreponame:Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA)instname:Fundação Oswaldo Cruz (FIOCRUZ)instacron:FIOCRUZLICENSElicense.txttext/plain1748https://arca.fiocruz.br/bitstreams/35b57362-b337-488d-953d-b93071b6ac2e/download8a4605be74aa9ea9d79846c1fba20a33MD51falseAnonymousREADORIGINALpaula_araujo_ioc_mest_2016.pdfapplication/pdf2720607https://arca.fiocruz.br/bitstreams/3613a364-9c83-4b3d-9dee-5988c51d56b6/download7abb2dae0a34225ca16de0464ec14bb6MD52trueAnonymousREADTEXTpaula_araujo_ioc_mest_2016.pdf.txtpaula_araujo_ioc_mest_2016.pdf.txtExtracted texttext/plain102745https://arca.fiocruz.br/bitstreams/40f6dfba-8ec8-4027-b38b-b7aca075f41b/downloadfad657c19959fb951b539501b7764ff8MD59falseAnonymousREADTHUMBNAILpaula_araujo_ioc_mest_2016.pdf.jpgpaula_araujo_ioc_mest_2016.pdf.jpgGenerated Thumbnailimage/jpeg14357https://arca.fiocruz.br/bitstreams/3b8ccad2-1183-479b-aa31-cfe132df873c/downloade7cc9309a17080f86c0a52e4b2ba146eMD510falseAnonymousREADicict/181742025-12-11 08:20:11.412open.accessoai:arca.fiocruz.br:icict/18174https://arca.fiocruz.brRepositório InstitucionalPUBhttps://www.arca.fiocruz.br/oai/requestrepositorio.arca@fiocruz.bropendoar:21352025-12-11T11:20:11Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA) - Fundação Oswaldo Cruz (FIOCRUZ)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
dc.title.none.fl_str_mv Aplicação de Técnicas Moleculares para Avaliação da Carga Parasitária de Amostras de Insetos Triatomíneos Infectados por Trypanosoma cruzi
title Aplicação de Técnicas Moleculares para Avaliação da Carga Parasitária de Amostras de Insetos Triatomíneos Infectados por Trypanosoma cruzi
spellingShingle Aplicação de Técnicas Moleculares para Avaliação da Carga Parasitária de Amostras de Insetos Triatomíneos Infectados por Trypanosoma cruzi
Araujo, Paula Finamore
Doença de Chagas
Rhodnius
Reação em Cadeia da Polimerase em Tempo Real
Trypanosoma cruzi
title_short Aplicação de Técnicas Moleculares para Avaliação da Carga Parasitária de Amostras de Insetos Triatomíneos Infectados por Trypanosoma cruzi
title_full Aplicação de Técnicas Moleculares para Avaliação da Carga Parasitária de Amostras de Insetos Triatomíneos Infectados por Trypanosoma cruzi
title_fullStr Aplicação de Técnicas Moleculares para Avaliação da Carga Parasitária de Amostras de Insetos Triatomíneos Infectados por Trypanosoma cruzi
title_full_unstemmed Aplicação de Técnicas Moleculares para Avaliação da Carga Parasitária de Amostras de Insetos Triatomíneos Infectados por Trypanosoma cruzi
title_sort Aplicação de Técnicas Moleculares para Avaliação da Carga Parasitária de Amostras de Insetos Triatomíneos Infectados por Trypanosoma cruzi
author Araujo, Paula Finamore
author_facet Araujo, Paula Finamore
author_role author
dc.contributor.member.none.fl_str_mv Bruno, Rafaela Vieira
Gonzalez, Marcelo Salabert
Roque, André Luiz Rodrigues
Gomes, Suzete Araujo Oliveira
Waghabi, Mariana Caldas
Waniek, Peter Josef
dc.contributor.author.fl_str_mv Araujo, Paula Finamore
dc.contributor.advisor1.fl_str_mv Moreira, Otacílio da Cruz
Brito, Constança Felícia De Paoli de Carvalho
contributor_str_mv Moreira, Otacílio da Cruz
Brito, Constança Felícia De Paoli de Carvalho
dc.subject.decs.none.fl_str_mv Doença de Chagas
Rhodnius
Reação em Cadeia da Polimerase em Tempo Real
Trypanosoma cruzi
topic Doença de Chagas
Rhodnius
Reação em Cadeia da Polimerase em Tempo Real
Trypanosoma cruzi
description A doença de Chagas constitui a quarta mais importante doença tropical, suplantada somente pela malária, tuberculose e esquistossomose. A análise por microscopia é o método clássico para descrição de infecção natural de triatomíneos por Trypanosoma cruzi e apresenta algumas limitações como baixa sensibilidade e reprodutibilidade, dificuldade de exame nos diferentes estágios evolutivos dos vetores, necessidade da análise em insetos frescos, além de ser um procedimento extremamente laborioso. Nesse contexto, a utilização da PCR em Tempo real (qPCR) para o diagnóstico de T. cruzi apresenta várias vantagens, como maior sensibilidade, rapidez e reprodutibilidade, possibilitando investigar o desenvolvimento do parasito no vetor. Neste trabalho, foi desenvolvido um ensaio multiplex de qPCR pelo sistema TaqMan com alvos para o gene correspondente à região 12S do RNA ribossomal de triatomíneos e para o DNA nuclear satélite de T. cruzi, capaz de estimar a carga parasitária em amostras de insetos positivas para infecção por T. cruzi. Além disso, padronizamos uma qPCR com transcrição reversa (RT-qPCR), com alvo para o gene T. cruzi GAPDH, capaz de quantificar parasitos viáveis em amostras de triatomíneos. A reação de qPCR multiplex apresentou uma detecção linear para T. cruzi na faixa de 105 a 0,5 equivalentes de parasitos e para triatomíneo na faixa de 3 a 1,5 x 10-4 equivalentes de triatomíneo. Além disso, foi possível determinar um Limite de Detecção em 0,41 eq. Parasitos. Para validação clínica da PCR quantitativa, 13 amostras de triatomíneos coletados em campo, positivas para infecção por T. cruzi, foram quantificadas e apresentaram cargas variadas, cuja mediana foi de 105 eq. parasito/eq. triatomíneo Posteriormente, para acompanhar o desenvolvimento do T. cruzi (Dm28c) em Rhodnius prolixus, ao longo de todo o trato digestivo e das suas diferentes porções, RNA e DNA total foram extraídos de insetos em diferentes períodos após a alimentação com sangue contendo T. cruzi. Foi possível observar que, a partir de 9 dias pós-alimentação dos insetos, ocorre uma diminuição da quantidade de parasitas viáveis (detectados por RNAm) em todo o trato digestivo do vetor, que não é acompanhada pela diminuição da quantidade de parasitos totais (detectados por DNA). Sendo que, avaliando separadamente o conteúdo intestinal, esta diminuição ocorre principalmente na porção anterior do intestino médio do inseto. Em paralelo, foi observado através de uma RT-qPCR com alvo no gene TcS5, altamente expresso nas formas tripomastigotas, detecção destas formas apenas na quarta semana após alimentação. Os ensaios de qPCR e RT-qPCR desenvolvidos neste estudo contribuirão para para determinar a taxa de infecção de triatomíneos silvestres, além de auxiliar em estudos sobre competência vetorial de triatomíneos e a incidência da doença de Chagas
publishDate 2016
dc.date.issued.fl_str_mv 2016
dc.date.accessioned.fl_str_mv 2017-03-27T14:52:30Z
dc.date.available.fl_str_mv 2017-03-27T14:52:30Z
dc.type.status.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/publishedVersion
dc.type.driver.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/masterThesis
format masterThesis
status_str publishedVersion
dc.identifier.citation.fl_str_mv ARAUJO, P. F Aplicação de Técnicas Moleculares para Avaliação da Carga Parasitária de Amostras de Insetos Triatomíneos Infectados por Trypanosoma Cruzi. 2016. 77f. Dissertação (Mestrado em Biologia Celular e Molecular) - Fundação Oswaldo Cruz, Instituto Oswaldo Cruz, Rio de janeiro, RJ, 2016
dc.identifier.uri.fl_str_mv https://arca.fiocruz.br/handle/icict/18174
identifier_str_mv ARAUJO, P. F Aplicação de Técnicas Moleculares para Avaliação da Carga Parasitária de Amostras de Insetos Triatomíneos Infectados por Trypanosoma Cruzi. 2016. 77f. Dissertação (Mestrado em Biologia Celular e Molecular) - Fundação Oswaldo Cruz, Instituto Oswaldo Cruz, Rio de janeiro, RJ, 2016
url https://arca.fiocruz.br/handle/icict/18174
dc.language.iso.fl_str_mv por
language por
dc.rights.driver.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/openAccess
eu_rights_str_mv openAccess
dc.source.none.fl_str_mv reponame:Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA)
instname:Fundação Oswaldo Cruz (FIOCRUZ)
instacron:FIOCRUZ
instname_str Fundação Oswaldo Cruz (FIOCRUZ)
instacron_str FIOCRUZ
institution FIOCRUZ
reponame_str Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA)
collection Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA)
bitstream.url.fl_str_mv https://arca.fiocruz.br/bitstreams/35b57362-b337-488d-953d-b93071b6ac2e/download
https://arca.fiocruz.br/bitstreams/3613a364-9c83-4b3d-9dee-5988c51d56b6/download
https://arca.fiocruz.br/bitstreams/40f6dfba-8ec8-4027-b38b-b7aca075f41b/download
https://arca.fiocruz.br/bitstreams/3b8ccad2-1183-479b-aa31-cfe132df873c/download
bitstream.checksum.fl_str_mv 8a4605be74aa9ea9d79846c1fba20a33
7abb2dae0a34225ca16de0464ec14bb6
fad657c19959fb951b539501b7764ff8
e7cc9309a17080f86c0a52e4b2ba146e
bitstream.checksumAlgorithm.fl_str_mv MD5
MD5
MD5
MD5
repository.name.fl_str_mv Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA) - Fundação Oswaldo Cruz (FIOCRUZ)
repository.mail.fl_str_mv repositorio.arca@fiocruz.br
_version_ 1855588340147945472