Imobilização e estabilização de Alcalase® em Immobead 350 e em Quitosana ativada por diferentes métodos visando aplicação em reação modelo

Detalhes bibliográficos
Ano de defesa: 2018
Autor(a) principal: Amorim, Kímberle Paiva dos Santos
Orientador(a): Gonçalves, Luciana Rocha Barros
Banca de defesa: Não Informado pela instituição
Tipo de documento: Dissertação
Tipo de acesso: Acesso aberto
Idioma: por
Instituição de defesa: Não Informado pela instituição
Programa de Pós-Graduação: Não Informado pela instituição
Departamento: Não Informado pela instituição
País: Não Informado pela instituição
Palavras-chave em Português:
Link de acesso: http://www.repositorio.ufc.br/handle/riufc/32334
Resumo: In this work, the protease Alcalase® was immobilized initially on an epoxy-activated support ― Immobead 350. The derivative (immobilization at pH 10, for 24 hours), which showed activity of 26,1 UBANE/g, was applied in the tilapia gelatin hydrolysis, aiming to obtain peptides with antioxidant activity. After 3 reactional cycles, the insoluble biocatalyst lost the ability to produce bioactive peptides. Several immobilization conditions were then tested by altering pH medium, incubation time, loading offered, immobilized enzyme crosslinking and presence of inhibitor during the process, and also a chemical modification of the support for aldehyde groups insertion was tested. All the derivatives obtained showed lower thermal stability than the non-immobilized enzyme. Also chitosan activated with three different agents ― glutaraldehyde, divinylsulfone and glyoxyl ― was used as support for Alcalase® immobilization. Immobilization conditions such as time and pH medium were evaluated. For immobilizations in support activated with glutaraldehyde, the immobilization yield for every studied times (15h to 96h) was 100%, and the biocatalysts showed activities around 30 to 45 UBANE /g. The immobilizations in divinylsulfone-activated support showed yields of less than 60% for every studied times (24h to 96h) and values of catalytic activity around 5 to 10 UBANE/g for immobilizations at pH 7, and around 20 at 30 UBANE /g for immobilizations at pH 10. The immobilizations on chitosan activated with glyoxyl showed values of yield lower than 35% for every studied times (24h to 96h) and values of catalytic activity which did not exceed 6 UBANE/g. Thermal inactivation assays at 60 ° C and pH 8 were performed, and the most stable biocatalysts were those of immobilization on Glutaraldehyde-Chitosan at pH 7 for 72h (SF = 4,4) on DVS-Chitosan at pH 10 for 24h (SF = 3,3) and on Glyoxyl-Chitosan at pH 10 for 24h (SF = 3,3). The operational stability of the derivatives was evaluated by the hydrolysis of Azocasein. After 6 consecutive cycles, the derivatives of Glutaraldehyde-Chitosan immobilization showed no loss of activity, whereas the derivative of DVS-Chitosan immobilization at pH 10 for 24 hours retained 75,5% of its activity and the derivative of Glioxil- Chitosan immobilization at pH 10 for 24 hours retained only 10% of its activity. Thus, the Glutaraldehyde-Chitosan derivatives presented the best results of catalytic activity, thermal stability and operational stability.
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Several immobilization conditions were then tested by altering pH medium, incubation time, loading offered, immobilized enzyme crosslinking and presence of inhibitor during the process, and also a chemical modification of the support for aldehyde groups insertion was tested. All the derivatives obtained showed lower thermal stability than the non-immobilized enzyme. Also chitosan activated with three different agents ― glutaraldehyde, divinylsulfone and glyoxyl ― was used as support for Alcalase® immobilization. Immobilization conditions such as time and pH medium were evaluated. For immobilizations in support activated with glutaraldehyde, the immobilization yield for every studied times (15h to 96h) was 100%, and the biocatalysts showed activities around 30 to 45 UBANE /g. 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After 6 consecutive cycles, the derivatives of Glutaraldehyde-Chitosan immobilization showed no loss of activity, whereas the derivative of DVS-Chitosan immobilization at pH 10 for 24 hours retained 75,5% of its activity and the derivative of Glioxil- Chitosan immobilization at pH 10 for 24 hours retained only 10% of its activity. Thus, the Glutaraldehyde-Chitosan derivatives presented the best results of catalytic activity, thermal stability and operational stability.Neste trabalho, a protease Alcalase® foi imobilizada inicialmente em suporte ativado com grupos epóxi, Immobead 350. O derivado da imobilização (à pH 10, por 24 h) nesse suporte, com atividade de 26,1 UBANE/g, foi aplicado na reação de hidrólise da gelatina de tilápia, visando a obtenção de peptídeos com atividade antioxidante. Após 3 ciclos reacionais, o biocatalisador insolúvel perdeu a capacidade de produzir peptídeos bioativos. Diversas condições de imobilização foram, então, testadas, alterando-se pH, tempo de incubação, carga oferecida, reticulação da enzima imobilizada e presença de inibidor durante o processo, além de uma modificação química no suporte para inserção de grupos aldeídos. Todos os derivados obtidos apresentaram estabilidade térmica inferior à enzima não imobilizada. Utilizou-se, também, Quitosana ativada com três agentes diferentes ― glutaraldeído, divinilsulfona e glioxil ― como suporte para imobilização de Alcalase®. Condições de pH e tempo de imobilização foram avaliadas. Para as imobilizações em suporte ativado com glutaraldeído, o rendimento de imobilização para todos os tempos estudados (15h a 96h) foi de 100% e os biocatalisadores apresentaram atividades em torno de 30 a 45 UBANE/g. Já as imobilizações em suporte ativado com divinilsulfona apresentaram rendimentos inferiores a 60% para todos os tempos estudados (24h a 96h) e valores de atividade catalítica em torno de 5 a 10 UBANE/g para as imobilizações à pH 7, e em torno de 20 a 30 UBANE/g para as imobilizações à pH 10. As imobillizações em quitosana ativada com glioxil apresentaram valores de rendimento inferiores a 35% para todos os tempos estudados (24h a 96h) e valores de atividade catalítica que não ultrapassram 6 UBANE/g. Ensaios de inativação térmica à 60 °C e pH 8 foram realizados, e os derivados mais estáveis foram os das imobilizações em Glutaraldeído- Quitosana à pH 7 por 72h (FE = 4,4), em DVS-Quitosana à pH 10 por 24h (FE = 3,3) e em Glioxil-Quitosana à pH 10 por 24h (FE = 3,3). Avaliou-se a estabilidade operacional dos derivados através da hidrólise da Azocaseína. Após 6 ciclos consecutivos, os derivados da imobilização Glutaraldeído-Quitosana não apresentaram perda de atividade, enquanto que o derivado da imobilização em DVS-Quitosana à pH 10 por 24 horas reteve 75,5% de sua atividade e o derivado da imobilização em Glioxil-Quitosana à pH 10 por 24 horas reteve apenas 10% de sua atividade. Assim, os derivados de Glutaraldeído-Quitosana apresentaram os melhores resultados de atividade catalítica, estabilidade térmica e estabilidade operacional.Engenharia químicaHidróliseBiocatalisadoresCatáliseAlcalase®Tilapia gelatin hydrolysisImmobilizationStabilityImobilização e estabilização de Alcalase® em Immobead 350 e em Quitosana ativada por diferentes métodos visando aplicação em reação modeloinfo:eu-repo/semantics/publishedVersioninfo:eu-repo/semantics/masterThesisporreponame:Repositório Institucional da Universidade Federal do Ceará (UFC)instname:Universidade Federal do Ceará (UFC)instacron:UFCinfo:eu-repo/semantics/openAccessORIGINAL2018_dis_kpsamorim.pdf2018_dis_kpsamorim.pdfapplication/pdf2334826http://repositorio.ufc.br/bitstream/riufc/32334/7/2018_dis_kpsamorim.pdfcb9b48e1a00f48d035e3b642c394d1a6MD57LICENSElicense.txtlicense.txttext/plain; charset=utf-81748http://repositorio.ufc.br/bitstream/riufc/32334/8/license.txt8a4605be74aa9ea9d79846c1fba20a33MD58riufc/323342020-09-15 15:57:24.026oai:repositorio.ufc.br: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Repositório InstitucionalPUBhttp://www.repositorio.ufc.br/ri-oai/requestbu@ufc.br || repositorio@ufc.bropendoar:2020-09-15T18:57:24Repositório Institucional da Universidade Federal do Ceará (UFC) - Universidade Federal do Ceará (UFC)false
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