Pesquisa e desenvolvimento de um novo antiparasitário para administração oral em cães

Detalhes bibliográficos
Ano de defesa: 2023
Autor(a) principal: Chagas, Bruno Cabral
Orientador(a): Nobre, Márcia de Oliveira
Banca de defesa: Não Informado pela instituição
Tipo de documento: Tese
Tipo de acesso: Acesso aberto
Idioma: por
Instituição de defesa: Universidade Federal de Pelotas
Programa de Pós-Graduação: Programa de Pós-Graduação em Veterinária
Departamento: Não Informado pela instituição
País: Brasil
Palavras-chave em Português:
Área do conhecimento CNPq:
Link de acesso: http://guaiaca.ufpel.edu.br/xmlui/handle/prefix/19325
Resumo: A nitazoxanida (NTZ) é um antiparasitário que possui uma importante e ampla ação frente a agentes microbianos, helmintos (como Toxocara sp. e Ancylostoma sp.) e protozoários (como Giardia sp.). No entanto, no Brasil até o momento não existem formulações que façam uso dessa molécula no tratamento destes parasitos em animais. Tendo em vista, que os parasitos fazem parte da cadeia zoonótica, despertam preocupação dentro do âmbito clínico e epidemiológico da veterinária por seu largo potencial infeccioso e também pelo crescente aumento da resistência as medicações padrão usadas no tratamento destas infecções, afirma-se a importância da pesquisa de antiparasitários seguros e com baixa capacidade de desenvolvimento de resistência. O objetivo deste trabalho foi avaliar a toxicidade e eficácia da nitazoxanida isolada e associada a, ivermectina, pirantel, febantel e praziquantel in vitro, ex vivo e in vivo. Foram realizados testes de eficácia in vitro sobre ovos de Ancylostoma sp., Toxocara sp e Giardia sp pela metodologia de filtragem e recuperação de estruturas parasitárias e teste de toxicidade e degradação do tapete celular em células renais MDCK e MDBK com leitura da degradação por espectofotometria. Foi realizado o teste de hemotoxicidade para avaliação de hemólise, sendo utilizado como controle positivo uma solução detergente e controle negativo uma solução alcalina para avalição do potencial de degradação de hemácias. Para realização do experimento ex vivo, foi utilizado o modelo de irritabilidade ocular em olhos de frango, sendo computado em diferentes tempos, o nível de irritabilidade dos globos oculares sobre a instilação de NTZ associada e isolada sendo utilizado como controle negativo soro fisiológico. Nos testes in vivo em modelo murino, foi realizada a análise de eficácia do produto na dosagem terapêutica por redução da contaminação parasitária de ovos de Ancylostoma sp., Toxocara sp e Giardia sp. Já a análise de toxicidade aguda e crônica foi realizada pela administração do produto em dose terapêutica, sobredose e subdose, sendo avaliados os sinais clínicos, avaliação comportamental e alteração dos parâmetros bioquímicos renais e hepáticos. A análise estatística foi realizada através de porcentagem, contagem de redução de ovos para determinação e Kruskal-Wallis. Nos estudos de citotoxicidade in vitro foi demonstrado que quanto mais alta a dose de NTZ maior era a destruição celular renal em células MDCK. As concentrações acima de 30mg/kg apresentaram alta potencial de controle (98%) porém, com alta (97%) toxicidade celular. Assim a concentração da NTZ foi diminuída , a exemplo a de 10mg/kg utilizada no produto aqui proposto no qual obtivemos uma alta eficácia, e uma diminuição da toxicidade in vitro para 25%. Os dados expressos pelo uso da NTZ isolada no controle da Giardia sp, foram muito expressivos, visto que alcançaram o patamar de 99%, seguidos de 98% para Toxocara sp e 86% contra Ancylostoma sp. Já os testes de toxicidade sugeriram que o produto na concentrações terapêutica, testada projeta grande segurança visto que o mesmo não apresentou toxicidade. Os testes de eficácia in vitro demonstraram que o produto proposto (NTZ, pirantel, febantel, praziquantel e ivermectina) obteve alto potencial de eficácia no controle de nematódeos, alcançando níveis que variaram de 95%(Ancylostoma sp) a 98% (Toxocara sp). Frente a Giárdia sp, chegou na marca de 99% de eficácia, enquanto o controle positivo do estudo representado pelo uso associado de pirantel, febantel, praziquantel (antiparasitário de uso convencional para cães) obteve níveis de controle de nematódeo de 73% para Ancylostoma sp, 85% para Toxocara sp e contra Giardia sp 75%. Concluí-se que a ação da NTZ como agente simbiótico com outros antiparasitários foi extremamente notável, a ponto de ser considerada como um excelente parasiticida até mesmo em testes com a espécie alvo, principalmente em virtude de sua capacidade de eliminação das diferentes estruturas de nematódeos e protozoários. Nesse sentido a NTZ pode vir a ser uma excelente alternativa de controle antiparasitário.
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spelling 2026-01-14T09:39:10Z2026-012026-01-14T09:39:10Z2023-08-31CHAGAS, Bruno Cabral. Pesquisa e desenvolvimento de um novo antiparasitário à base de nitazoxanida para administração oral em cães. 2023. 88 f. Tese (Doutorado em Veterinária) - Faculdade de Veterinária, Universidade Federal de Pelotas, Pelotas, 2023.http://guaiaca.ufpel.edu.br/xmlui/handle/prefix/19325A nitazoxanida (NTZ) é um antiparasitário que possui uma importante e ampla ação frente a agentes microbianos, helmintos (como Toxocara sp. e Ancylostoma sp.) e protozoários (como Giardia sp.). No entanto, no Brasil até o momento não existem formulações que façam uso dessa molécula no tratamento destes parasitos em animais. Tendo em vista, que os parasitos fazem parte da cadeia zoonótica, despertam preocupação dentro do âmbito clínico e epidemiológico da veterinária por seu largo potencial infeccioso e também pelo crescente aumento da resistência as medicações padrão usadas no tratamento destas infecções, afirma-se a importância da pesquisa de antiparasitários seguros e com baixa capacidade de desenvolvimento de resistência. O objetivo deste trabalho foi avaliar a toxicidade e eficácia da nitazoxanida isolada e associada a, ivermectina, pirantel, febantel e praziquantel in vitro, ex vivo e in vivo. Foram realizados testes de eficácia in vitro sobre ovos de Ancylostoma sp., Toxocara sp e Giardia sp pela metodologia de filtragem e recuperação de estruturas parasitárias e teste de toxicidade e degradação do tapete celular em células renais MDCK e MDBK com leitura da degradação por espectofotometria. Foi realizado o teste de hemotoxicidade para avaliação de hemólise, sendo utilizado como controle positivo uma solução detergente e controle negativo uma solução alcalina para avalição do potencial de degradação de hemácias. Para realização do experimento ex vivo, foi utilizado o modelo de irritabilidade ocular em olhos de frango, sendo computado em diferentes tempos, o nível de irritabilidade dos globos oculares sobre a instilação de NTZ associada e isolada sendo utilizado como controle negativo soro fisiológico. Nos testes in vivo em modelo murino, foi realizada a análise de eficácia do produto na dosagem terapêutica por redução da contaminação parasitária de ovos de Ancylostoma sp., Toxocara sp e Giardia sp. Já a análise de toxicidade aguda e crônica foi realizada pela administração do produto em dose terapêutica, sobredose e subdose, sendo avaliados os sinais clínicos, avaliação comportamental e alteração dos parâmetros bioquímicos renais e hepáticos. A análise estatística foi realizada através de porcentagem, contagem de redução de ovos para determinação e Kruskal-Wallis. Nos estudos de citotoxicidade in vitro foi demonstrado que quanto mais alta a dose de NTZ maior era a destruição celular renal em células MDCK. As concentrações acima de 30mg/kg apresentaram alta potencial de controle (98%) porém, com alta (97%) toxicidade celular. Assim a concentração da NTZ foi diminuída , a exemplo a de 10mg/kg utilizada no produto aqui proposto no qual obtivemos uma alta eficácia, e uma diminuição da toxicidade in vitro para 25%. Os dados expressos pelo uso da NTZ isolada no controle da Giardia sp, foram muito expressivos, visto que alcançaram o patamar de 99%, seguidos de 98% para Toxocara sp e 86% contra Ancylostoma sp. Já os testes de toxicidade sugeriram que o produto na concentrações terapêutica, testada projeta grande segurança visto que o mesmo não apresentou toxicidade. Os testes de eficácia in vitro demonstraram que o produto proposto (NTZ, pirantel, febantel, praziquantel e ivermectina) obteve alto potencial de eficácia no controle de nematódeos, alcançando níveis que variaram de 95%(Ancylostoma sp) a 98% (Toxocara sp). Frente a Giárdia sp, chegou na marca de 99% de eficácia, enquanto o controle positivo do estudo representado pelo uso associado de pirantel, febantel, praziquantel (antiparasitário de uso convencional para cães) obteve níveis de controle de nematódeo de 73% para Ancylostoma sp, 85% para Toxocara sp e contra Giardia sp 75%. Concluí-se que a ação da NTZ como agente simbiótico com outros antiparasitários foi extremamente notável, a ponto de ser considerada como um excelente parasiticida até mesmo em testes com a espécie alvo, principalmente em virtude de sua capacidade de eliminação das diferentes estruturas de nematódeos e protozoários. Nesse sentido a NTZ pode vir a ser uma excelente alternativa de controle antiparasitário.Nitazoxanide (NTZ) is an antiparasitic that has an important and wide action against microbial agents, helminths (such as Toxocara sp. and Ancylostoma sp.) and protozoa (such as Giardia sp.). However, in Brazil so far there are no formulations that make use of this molecule in the treatment of these parasites in animals. Bearing in mind that the parasites are part of the zoonotic chain, arousing concern within the clinical and epidemiological scope of veterinary medicine due to its wide infectious potential and also due to the increasing resistance to standard medications used in the treatment of these infections, the importance of research on safe antiparasitics with low capacity for resistance development. The objective of this work was to evaluate the toxicity and efficacy of nitazoxanide alone and associated with ivermectin, pyrantel, febantel and praziquantel in vitro, ex vivo and in vivo. In vitro efficacy tests were carried out on eggs of Ancylostoma sp., Toxocara sp and Giardia sp by filtering methodology and recovery of parasitic structures and test of toxicity and degradation of the cell tapetum in kidney MDCK and MDBK cells with degradation reading by spectrophotometry. A hemotoxicity test was performed to assess hemolysis, using a detergent solution as a positive control and an alkaline solution as a negative control to assess the potential for degradation of red blood cells. To carry out the ex vivo experiment, the model of ocular irritability in chicken eyes was used, being computed at different times, the level of irritability of the eyeballs on the instillation of NTZ associated and isolated, being used as a negative control saline solution. In the in vivo tests in a murine model, the analysis of the efficacy of the product in the therapeutic dosage was carried out by reducing the parasitic contamination of eggs of Ancylostoma sp., Toxocara sp and Giardia sp. The analysis of acute and chronic toxicity was performed by administering the product at a therapeutic dose, overdose and underdose, evaluating clinical signs, behavioral assessment and changes in renal and hepatic biochemical parameters. Statistical analysis was performed using percentage, egg reduction count for determination and Kruskal-Wallis. In vitro cytotoxicity studies demonstrated that the higher the dose of NTZ, the greater the renal cell destruction in MDCK cells. Concentrations above 30mg/kg showed high control potential (98%) but with high (97%) cellular toxicity. Thus, the concentration of NTZ was reduced, like the 10mg/kg used in the product proposed here, in which we obtained high efficacy, and a decrease in in vitro toxicity to 25%. The data expressed by the use of isolated NTZ in the control of Giardia sp, were very expressive, since they reached the level of 99%, followed by 98% for Toxocara sp and 86% against Ancylostoma sp. The toxicity tests suggested that the product at therapeutic concentrations, tested, projects great safety since it did not show toxicity. The in vitro efficacy tests demonstrated that the proposed product (NTZ, pyrantel, febantel, praziquantel and ivermectin) obtained a high potential of efficacy in the control of nematodes, reaching levels that varied from 95% (Ancylostoma sp) to 98% (Toxocara sp) . Against Giárdia sp, it reached the mark of 99% of effectiveness, while the positive control of the study represented by the associated use of pyrantel, febantel, praziquantel (antiparasitic of conventional use for dogs) obtained levels of nematode control of 73% for Ancylostoma sp , 85% for Toxocara sp and against Giardia sp 75%. It was concluded that the action of NTZ as a symbiotic agent with other antiparasitics was extremely remarkable, to the point of being considered as an excellent parasiticide even in tests with the target species, mainly due to its capacity to eliminate the different structures of nematodes and protozoa. In this sense, NTZ can become an excellent alternative for antiparasitic control.Conselho Nacional de Pesquisa e Desenvolvimento Científico e Tecnológico - CNPqporUniversidade Federal de PelotasPrograma de Pós-Graduação em VeterináriaUFPelBrasilCC BY-NC-SAinfo:eu-repo/semantics/openAccessCIENCIAS AGRARIASMEDICINA VETERINARIAVermífugoPetsVermifugeToxocara sp.Ancylostoma sp.Giardia sp.Pesquisa e desenvolvimento de um novo antiparasitário para administração oral em cãesResearch and development of a new nitazoxanide-based antiparasitic for oral administration in dogs and catsinfo:eu-repo/semantics/publishedVersioninfo:eu-repo/semantics/doctoralThesishttps://orcid.org/0000-0002-3051-5027http://lattes.cnpq.br/4595136891109698https://orcid.org/0000-0003-3284-9167http://lattes.cnpq.br/3741542973280238Nizoli, Leandro Quintanahttp://lattes.cnpq.br/3556266527587195Nobre, Márcia de OliveiraChagas, Bruno Cabralreponame:Repositório Institucional da UFPel - Guaiacainstname:Universidade Federal de Pelotas (UFPEL)instacron:UFPELORIGINALTese_Bruno_Cabral_Chagas.pdfTese_Bruno_Cabral_Chagas.pdfapplication/pdf9595839http://guaiaca.ufpel.edu.br/xmlui/bitstream/prefix/19325/1/Tese_Bruno_Cabral_Chagas.pdf3c68b75655a6bedace144f1f4d3df057MD51open accessLICENSElicense.txtlicense.txttext/plain; charset=utf-81960http://guaiaca.ufpel.edu.br/xmlui/bitstream/prefix/19325/2/license.txta963c7f783e32dba7010280c7b5ea154MD52open accessTEXTTese_Bruno_Cabral_Chagas.pdf.txtTese_Bruno_Cabral_Chagas.pdf.txtExtracted texttext/plain131703http://guaiaca.ufpel.edu.br/xmlui/bitstream/prefix/19325/3/Tese_Bruno_Cabral_Chagas.pdf.txt4717fbcff9413f8014bcaa5a40c10e68MD53open accessTHUMBNAILTese_Bruno_Cabral_Chagas.pdf.jpgTese_Bruno_Cabral_Chagas.pdf.jpgGenerated Thumbnailimage/jpeg1264http://guaiaca.ufpel.edu.br/xmlui/bitstream/prefix/19325/4/Tese_Bruno_Cabral_Chagas.pdf.jpgdeaad1f4ab3ad6e78661d326d2eba90aMD54open accessprefix/193252026-01-15 03:02:45.325open accessoai:guaiaca.ufpel.edu.br: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Repositório InstitucionalPUBhttp://repositorio.ufpel.edu.br/oai/requestrippel@ufpel.edu.br || repositorio@ufpel.edu.br || aline.batista@ufpel.edu.bropendoar:2026-01-15T06:02:45Repositório Institucional da UFPel - Guaiaca - Universidade Federal de Pelotas (UFPEL)false
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