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Caracterização de uma enzima quimérica bifuncional celobiohidrolase: β-glicosidase de Aspergillus fumigatus para aproveitamento de resíduos agroindustriais

Detalhes bibliográficos
Ano de defesa: 2025
Autor(a) principal: Michelassi, Felipe
Orientador(a): Não Informado pela instituição
Banca de defesa: Não Informado pela instituição
Tipo de documento: Dissertação
Tipo de acesso: Acesso aberto
Idioma: por
Instituição de defesa: Biblioteca Digitais de Teses e Dissertações da USP
Programa de Pós-Graduação: Não Informado pela instituição
Departamento: Não Informado pela instituição
País: Não Informado pela instituição
Palavras-chave em Português:
Link de acesso: https://www.teses.usp.br/teses/disponiveis/59/59138/tde-20102025-170017/
Resumo: Os biocombustíveis despontam como uma alternativa renovável aos combustíveis fósseis, contribuindo para a mitigação das emissões de gases de efeito estufa e para a redução da dependência de recursos não renováveis. Entre as matérias-primas disponíveis, a biomassa lignocelulósica destaca-se como uma fonte promissora para a produção de produtos de alto valor agregado como o etanol de segunda geração. No entanto, sua conversão eficiente ainda constitui um desafio tecnológico relevante. Nesse contexto, as celulases exercem papel fundamental ao degradar a estrutura complexa da lignocelulose, liberando açúcares fermentáveis e a otimização do desempenho dessas enzimas, visando a diminuição nos custos do processo, o que é crucial para o avanço da bioeconomia. O presente estudo teve como objetivo o desenvolvimento de uma enzima quimérica bifuncional, AfCel6A::AfBgl1.3, obtida por meio da fusão entre a celobiohidrolase (AfCel6A, Afu3g01910) e a β-glicosidase (AfBgl1.3, Afu1g14710), ambas oriundas de Aspergillus fumigatus. A construção visou potencializar a atividade catalítica e a termoestabilidade da enzima resultante. A quimera recombinante foi expressa com sucesso em Pichia pastoris X-33 por um período de 6 dias com a adição diária de 1,5% (v/v) de metanol como indutor. A análise por SDS-PAGE revelou uma banda correspondente a aproximadamente 100 kDa, compatível com a massa molecular prevista. A purificação por afinidade, utilizando resina Ni Sepharose 6 Fast Flow, resultou em uma única banda proteica. A estrutura secundária da enzima purificada foi caracterizada por Dicroísmo Circular (CD), revelando a presença de 29-36% de α-hélices e 9,8-10% de folhas β, além de uma temperatura de fusão aparente (Tm) de 49,5°C. Os parâmetros bioquímicos e de atividade foram avaliados a partir do sobrenadante concentrado. A enzima apresentou temperatura ótima em torno de 40°C e faixa de pH ideal entre 5,4 e 6,0. A atividade enzimática foi significativamente modulada por 5 mM de Mn²+, Co²+ e Ag+, com aumentos de até 237%, 176% e 200,5%, respectivamente. Ainda, apresentou alta tolerância a glicose, não sofrendo inibição pelo produto. A avaliação funcional mostrou que a adição de 1,2 µg da quimera ao coquetel enzimático comercial Celluclast® 1.5L promoveu um efeito sinérgico, resultando em um aumento de até 59% na liberação de glicose durante a hidrólise do bagaço de cana-de-açúcar explodido após 12 horas de incubação. Esses resultados evidenciam o potencial da quimera AfCel6A::AfBgl1.3 como ferramenta biotecnológica promissora para a otimização da sacarificação de biomassas lignocelulósicas, e estão alinhados aos Objetivos de Desenvolvimento Sustentável (ODS), em especial ao ODS 12, que propõe assegurar padrões sustentáveis de produção e consumo. Com destaque para a meta 12.5 da ODS que visa \"Até 2030, reduzir substancialmente a geração de resíduos por meio da prevenção, redução, reciclagem e reutilização\".
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spelling Caracterização de uma enzima quimérica bifuncional celobiohidrolase: β-glicosidase de Aspergillus fumigatus para aproveitamento de resíduos agroindustriaisCharacterization of a bifunctional chimeric enzyme cellobiohydrolase: β-glucosidase from Aspergillus fumigatus for the utilization of agro-industrial residuesβ-glucosidase&beya;-glicosidaseBiocombustíveisBiofuelsCaracterização enzimáticaCellobiohydrolaseCelobiohidrolaseChimeric enzymeEnzima quiméricaEnzymatic characterizationEnzymatic hydrolysisHidrólise enzimáticaOs biocombustíveis despontam como uma alternativa renovável aos combustíveis fósseis, contribuindo para a mitigação das emissões de gases de efeito estufa e para a redução da dependência de recursos não renováveis. Entre as matérias-primas disponíveis, a biomassa lignocelulósica destaca-se como uma fonte promissora para a produção de produtos de alto valor agregado como o etanol de segunda geração. No entanto, sua conversão eficiente ainda constitui um desafio tecnológico relevante. Nesse contexto, as celulases exercem papel fundamental ao degradar a estrutura complexa da lignocelulose, liberando açúcares fermentáveis e a otimização do desempenho dessas enzimas, visando a diminuição nos custos do processo, o que é crucial para o avanço da bioeconomia. O presente estudo teve como objetivo o desenvolvimento de uma enzima quimérica bifuncional, AfCel6A::AfBgl1.3, obtida por meio da fusão entre a celobiohidrolase (AfCel6A, Afu3g01910) e a β-glicosidase (AfBgl1.3, Afu1g14710), ambas oriundas de Aspergillus fumigatus. A construção visou potencializar a atividade catalítica e a termoestabilidade da enzima resultante. A quimera recombinante foi expressa com sucesso em Pichia pastoris X-33 por um período de 6 dias com a adição diária de 1,5% (v/v) de metanol como indutor. A análise por SDS-PAGE revelou uma banda correspondente a aproximadamente 100 kDa, compatível com a massa molecular prevista. A purificação por afinidade, utilizando resina Ni Sepharose 6 Fast Flow, resultou em uma única banda proteica. A estrutura secundária da enzima purificada foi caracterizada por Dicroísmo Circular (CD), revelando a presença de 29-36% de α-hélices e 9,8-10% de folhas β, além de uma temperatura de fusão aparente (Tm) de 49,5°C. Os parâmetros bioquímicos e de atividade foram avaliados a partir do sobrenadante concentrado. A enzima apresentou temperatura ótima em torno de 40°C e faixa de pH ideal entre 5,4 e 6,0. A atividade enzimática foi significativamente modulada por 5 mM de Mn²+, Co²+ e Ag+, com aumentos de até 237%, 176% e 200,5%, respectivamente. Ainda, apresentou alta tolerância a glicose, não sofrendo inibição pelo produto. A avaliação funcional mostrou que a adição de 1,2 µg da quimera ao coquetel enzimático comercial Celluclast® 1.5L promoveu um efeito sinérgico, resultando em um aumento de até 59% na liberação de glicose durante a hidrólise do bagaço de cana-de-açúcar explodido após 12 horas de incubação. Esses resultados evidenciam o potencial da quimera AfCel6A::AfBgl1.3 como ferramenta biotecnológica promissora para a otimização da sacarificação de biomassas lignocelulósicas, e estão alinhados aos Objetivos de Desenvolvimento Sustentável (ODS), em especial ao ODS 12, que propõe assegurar padrões sustentáveis de produção e consumo. Com destaque para a meta 12.5 da ODS que visa \"Até 2030, reduzir substancialmente a geração de resíduos por meio da prevenção, redução, reciclagem e reutilização\".Biofuels have emerged as a renewable alternative to fossil fuels, contributing to the mitigation of greenhouse gas emissions and the reduction of dependence on non-renewable resources. Among the available feedstocks, lignocellulosic biomass stands out as a promising source for the production of high-value products such as second-generation ethanol. However, its efficient conversion remains a major technological challenge. In this context, cellulases play a key role by degrading the complex lignocellulosic structure and releasing fermentable sugars. Enhancing the performance of these enzymes is crucial to lowering process costs and advancing the bioeconomy. This study aimed to develop a bifunctional chimeric enzyme, AfCel6A::AfBgl1.3, constructed by fusing the cellobiohydrolase (AfCel6A, Afu3g01910) and the β-glucosidase (AfBgl1.3, Afu1g14710), both derived from Aspergillus fumigatus. The design sought to improve the catalytic activity and thermostability of the resulting enzyme. The recombinant chimera was successfully expressed in Pichia pastoris X-33 over six days, using 1.5% (v/v) methanol as an inducer. SDS-PAGE analysis revealed a band of approximately 100 kDa, consistent with the predicted molecular weight. Purification by affinity chromatography using Ni Sepharose 6 Fast Flow resin resulted in a single protein band. The secondary structure of the purified enzyme was characterized by circular dichroism (CD), revealing 29-36% α-helices and 9.8-10% β-sheets, with an apparent melting temperature (Tm) of 49.5°C. Biochemical and activity parameters were evaluated using the concentrated supernatant. The enzyme exhibited an optimal temperature around 40°C and an ideal pH range between 5.4 and 6.0. Enzymatic activity was significantly enhanced by 5 mM of Mn²+, Co²+, and Ag+, with increases of up to 237%, 176%, and 200.5%, respectively. Furthermore, the enzyme showed tolerance to high glucose concentrations and was not inhibited by its product. Functional assays demonstrated that the addition of 1.2 µg of the chimera to the commercial enzymatic cocktail Celluclast® 1.5L resulted in a synergistic effect, promoting up to a 59% increase in the hydrolysis of steam-exploded sugarcane bagasse after 12 hours of incubation. These results highlight the potential of the AfCel6A::AfBgl1.3 chimera as a promising biotechnological tool for optimizing the saccharification of lignocellulosic biomass. This work is aligned with the United Nations Sustainable Development Goals (SDGs), particularly SDG 12, which aims to ensure sustainable consumption and production patterns - with emphasis on Target 12.5: \"By 2030, substantially reduce waste generation through prevention, reduction, recycling, and reuse.\"Biblioteca Digitais de Teses e Dissertações da USPDinamarco, Taísa MagnaniMichelassi, Felipe2025-08-19info:eu-repo/semantics/publishedVersioninfo:eu-repo/semantics/masterThesisapplication/pdfhttps://www.teses.usp.br/teses/disponiveis/59/59138/tde-20102025-170017/reponame:Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da USPinstname:Universidade de São Paulo (USP)instacron:USPLiberar o conteúdo para acesso público.info:eu-repo/semantics/openAccesspor2025-10-31T18:44:10Zoai:teses.usp.br:tde-20102025-170017Biblioteca Digital de Teses e Dissertaçõeshttp://www.teses.usp.br/PUBhttp://www.teses.usp.br/cgi-bin/mtd2br.plvirginia@if.usp.br|| atendimento@aguia.usp.br||virginia@if.usp.bropendoar:27212025-10-31T18:44:10Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da USP - Universidade de São Paulo (USP)false
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