Expressão da proteína de envelope e do vírus da febre amarela em Leishmania tarentolae
| Ano de defesa: | 2011 |
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| Link de acesso: | https://arca.fiocruz.br/handle/icict/61650 |
Resumo: | Os tripanossomatídeos apresentam-se como potencial alternativa para expressão de proteínas heterólogas. O sistema de expressão baseado em L. tarentolae possui uma série de vantagens dentre os sistemas comumente utilizados, incluindo a capacidade de realizar modificações pós traducionais promovendo um padrão de glicosilação mais próximo ao realizado em proteínas sintetizadas por células de mamíferos. Além disso, esse protozoário é facilmente cultivável em meios de baixo custo obtendo-se altas densidades celulares em um curto espaço de tempo, e a possibilidade de secreção da proteína recombinante para o meio de cultura. O objetivo do trabalho é avaliar o potencial desta plataforma de expressão de proteínas recombinantes em L. tarentolae utilizando a proteína E do vírus vacinal da febre amarela 17DD como modelo experimental, para então estabelecer essa ferramenta de expressão no Laboratório de Tecnologia Recombinante. A partir do RNA viral da cepa vacinal, o gene de interesse foi amplificado por RT-PCR, clonado e propagado em E.coli TOP10 no vetor bifuncional pLEXSY-hyg2. Após a transfecção as células de L. tarentolae recombinantes foram obtidas através da seleção clonal em meio sólido seletivo com o antibiótico higromicina e confirmados por PCR e sequenciamento nucleotídico. As sequências nucleotídicas traduzidas em aminoácidos dos clones selecionados demonstraram uma identidade de 100% com a sequência molde do vírus vacinal. Obteve-se um anti soro policlonal a partir da proteína E recombinante produzida em E.coli BL21 DE3 Star. O soro foi caracterizado e demonstrou título de até 512.000, e embora gerado a partir de uma proteína recombiante foi capaz de reconhecer a proteína em sua forma nativa em um extrato de cultura de células infectadas com o vírus vacinal. A expressão da proteína E foi avaliada em amostras de sobrenadantes de cultura, em RPMI e PBS Glucose, e pellets celulares lisados de L. tarentolae por SDS-PAGE e Western Blotting. Contudo, os dados da expressão foram negativos. Ao se avaliar por RTPCR o processamento pós-transcricional das moléculas de RNAm observou-se que os transcritos não possuiam a inserção da sequência spliced leader (SL) necessária para a tradução. Esses dados corroboram com os resultados negativos obtidos por SDS-PAGE e Western Blotting. Investigações futuras devem ser realizadas como o sequenciamento das regiões UTRs para verificação da presença das sequências necessárias para o fornecimento do sinal para a reação de trans-splicing. |
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Chagas, Michel GomesAlmeida, Renato Porrozzi dePinto, Verônica SalernoMcIntosh, DouglasMedeiros, Marco Alberto2023-12-07T12:37:08Z2023-12-07T12:37:08Z2011CHAGAS, Michel Gomes. Expressão da Proteína de Envelope e do Vírus da Febre Amarela em Leishmania tarentolae. 2013. 90 f. Dissertação (mestrado) - Instituto de Tecnologia em Imunobiológicos, Pós-Graduação em Tecnologia de Imunobiológicos, 2013.https://arca.fiocruz.br/handle/icict/61650Os tripanossomatídeos apresentam-se como potencial alternativa para expressão de proteínas heterólogas. O sistema de expressão baseado em L. tarentolae possui uma série de vantagens dentre os sistemas comumente utilizados, incluindo a capacidade de realizar modificações pós traducionais promovendo um padrão de glicosilação mais próximo ao realizado em proteínas sintetizadas por células de mamíferos. Além disso, esse protozoário é facilmente cultivável em meios de baixo custo obtendo-se altas densidades celulares em um curto espaço de tempo, e a possibilidade de secreção da proteína recombinante para o meio de cultura. O objetivo do trabalho é avaliar o potencial desta plataforma de expressão de proteínas recombinantes em L. tarentolae utilizando a proteína E do vírus vacinal da febre amarela 17DD como modelo experimental, para então estabelecer essa ferramenta de expressão no Laboratório de Tecnologia Recombinante. A partir do RNA viral da cepa vacinal, o gene de interesse foi amplificado por RT-PCR, clonado e propagado em E.coli TOP10 no vetor bifuncional pLEXSY-hyg2. Após a transfecção as células de L. tarentolae recombinantes foram obtidas através da seleção clonal em meio sólido seletivo com o antibiótico higromicina e confirmados por PCR e sequenciamento nucleotídico. As sequências nucleotídicas traduzidas em aminoácidos dos clones selecionados demonstraram uma identidade de 100% com a sequência molde do vírus vacinal. Obteve-se um anti soro policlonal a partir da proteína E recombinante produzida em E.coli BL21 DE3 Star. O soro foi caracterizado e demonstrou título de até 512.000, e embora gerado a partir de uma proteína recombiante foi capaz de reconhecer a proteína em sua forma nativa em um extrato de cultura de células infectadas com o vírus vacinal. A expressão da proteína E foi avaliada em amostras de sobrenadantes de cultura, em RPMI e PBS Glucose, e pellets celulares lisados de L. tarentolae por SDS-PAGE e Western Blotting. Contudo, os dados da expressão foram negativos. Ao se avaliar por RTPCR o processamento pós-transcricional das moléculas de RNAm observou-se que os transcritos não possuiam a inserção da sequência spliced leader (SL) necessária para a tradução. Esses dados corroboram com os resultados negativos obtidos por SDS-PAGE e Western Blotting. Investigações futuras devem ser realizadas como o sequenciamento das regiões UTRs para verificação da presença das sequências necessárias para o fornecimento do sinal para a reação de trans-splicing.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto de Tecnologia em Imunobiológicos. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.porProteína recombinanteVírus da febre amarelaLeishmania tarentolaeSistemas de expressãoProteínaExpressão da proteína de envelope e do vírus da febre amarela em Leishmania tarentolaeinfo:eu-repo/semantics/publishedVersioninfo:eu-repo/semantics/masterThesis2013Instituto de Tecnologia em Imunobiológicos.Mestrado ProfissionalRio de Janeiro/RJPrograma de Pós-Graduação em Tecnologia de Imunobiológicos.info:eu-repo/semantics/openAccessreponame:Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA)instname:Fundação Oswaldo Cruz (FIOCRUZ)instacron:FIOCRUZORIGINALmichel-gomes-chagas.pdfmichel-gomes-chagas.pdfapplication/pdf12885888https://arca.fiocruz.br/bitstreams/1454f09d-8366-4aa3-98ad-2dd65bebdec1/download6e236a7c977c4c4d6d3cf601bad22b7fMD52trueAnonymousREADLICENSElicense.txttext/plain1748https://arca.fiocruz.br/bitstreams/748b31ac-5a31-47dc-a2aa-4e90e99a03cc/download8a4605be74aa9ea9d79846c1fba20a33MD51falseAnonymousREADTEXTmichel-gomes-chagas.pdf.txtmichel-gomes-chagas.pdf.txtExtracted texttext/plain103009https://arca.fiocruz.br/bitstreams/88961d6b-f1ab-46b3-a3ec-f729938657a8/downloadb89a10594222b41ea6b1590b0987cd5dMD57falseAnonymousREADTHUMBNAILmichel-gomes-chagas.pdf.jpgmichel-gomes-chagas.pdf.jpgGenerated Thumbnailimage/jpeg14870https://arca.fiocruz.br/bitstreams/0bd4338c-c8f5-437c-8cd6-ef747991a7a0/download113c7cd3544d66c19719121200673a7cMD58falseAnonymousREADicict/616502025-12-11 08:46:52.224open.accessoai:arca.fiocruz.br:icict/61650https://arca.fiocruz.brRepositório InstitucionalPUBhttps://www.arca.fiocruz.br/oai/requestrepositorio.arca@fiocruz.bropendoar:21352025-12-11T11:46:52Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA) - Fundação Oswaldo Cruz (FIOCRUZ)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 |
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