Caracterização do sêmen de tambaqui Colossoma macropomum (Curvier, 1818) e criopreservação em diluentes à base de água de coco em pó (ACP-104)
| Ano de defesa: | 2010 |
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| Tipo de documento: | Tese |
| Tipo de acesso: | Acesso aberto |
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| Instituição de defesa: |
Universidade Estadual do Ceará
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| Programa de Pós-Graduação: |
Não Informado pela instituição
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| Palavras-chave em Português: | |
| Link de acesso: | https://siduece.uece.br/siduece/trabalhoAcademicoPublico.jsf?id=92524 |
Resumo: | <div style="">A presente tese teve por objetivo avaliar as características espermáticas do sêmen de tambaqui, com (I) e sem indução (NI) hormonal, por um período de doze meses, elaborar a curva de concentração de espermatozóides de tambaqui através de câmara de Neubauer e espectrofotômetro, assim como analisar as características cinéticas de sêmen de Tambaqui, C. macropomum (Curvier, 1818), criopreservado em criosoluções a base de ACP 104® ou solução de Ringer, através da análise de sêmen auxiliado por computador (CASA). Foram utilizados 26 machos com idade média de três anos, pertencentes ao Centro de Pesquisas em Aqüicultura (CPAq) do Departamento Nacional de Obras Contra às Secas (DNOCS), devidamente identificados com chips magnéticos. A análise através do (CASA) foi usada para avaliar os efeitos da criopreservação na motilidade dos espermatozóides do tambaqui, diluído em água de coco em pó (ACP-104) e em Ringer modificado para peixes, com dois crioprotetores DMSO e Metilglicol, na concentração de 10%, em três diluições de sêmen (1:3, 1:4 e 1:5) para cada solução contendo diluidor e crioprotetor. Foram avaliados os percentuais de espermatozóides móveis e estáticos, bem como os parâmetros de motilidade espermática e velocidades curvilinear (VCL), velocidade em linha reta (VSL), velocidade média (VAP) e linearidade (LIN), nos diferentes meios e diluições, descongelados 15 dias após congelamento. Encontrou-se os seguintes dados seminais para o sêmen coletado do grupo I e NI, nessa ordem: volume médio de 5,05 mL e 0,55 mL (p<0,05); pH médio de 8,21 e 8,09 (p> 0,05); osmolaridade média de 320,51 e 323 mOsm/Kg (p> 0,05) e concentração espermática média de 22,93 x 109 e 40,46 x 109 sptz/mL (p<0,05). A produção espermática total foi de 115,79 x 109 sptz/mL no grupo I sendo de 22,25 x 109 sptz/mL no grupo NI. A concentração espermática individual variou de 11,40 a 71,13x109 espermatozóides/mL. A avaliação da concentração espermática, por espectrofotometria (λ=540nm) mostrou variação de transmitância de 95% a 62,1%, além de uma forte correlação negativa, entre a concentração espermática em câmara de Neubauer e a transmitância a 540 nm. A mensuração da concentração gerou equação Y= 100,293 - 0,509X; R2 = 0,966, (p<0,0001) SAS 2003, e se mostrou eficiente, podendo ser empregada em procedimentos de rotina em laboratório de reprodução artificial de peixes. Os resultados obtidos com o diluente à base de água de coco em pó (ACP-104) se mostraram superiores em relação ao meio Ringer em relação à quantidade de espermatozóides móveis, (45,63%±3,58 e 30,64%±2,67, respectivamente, p<0,05) e quando se comparou os dois diluidores com os crioprotetores DMSO (dimetilsufóxido) e metilglicol, o ACP-104 também mostrou resultados superiores aos obtidos com a solução de Ringer (56,18%±5,29 e 34,52%±3,49, respectivamente, (p<0,05). Diante do exposto conclui-se que a indução hormonal se faz necessária para facilitar a manipulação seminal no tambaqui, não alterando as características do sêmen do mesmo. A determinação da concentração espermática através da espectrofotometria (λ= 540nm) nesta espécie é eficiente. Os resultados encontrados nesse estudo mostraram a superioridade do ACP-104® como meio diluente para criopreservação do sêmen do tambaqui, sendo, portanto, indicado para a criopreservação nesta espécie. Palavras chaves: Peixe. Tambaqui. CASA. Criopreservação. Água de coco em pó. ACP. </div> |
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Caracterização do sêmen de tambaqui Colossoma macropomum (Curvier, 1818) e criopreservação em diluentes à base de água de coco em pó (ACP-104)Água de coco em pó Ciências veterinárias Criopreservação do sêmen de tambaqui Peixe<div style="">A presente tese teve por objetivo avaliar as características espermáticas do sêmen de tambaqui, com (I) e sem indução (NI) hormonal, por um período de doze meses, elaborar a curva de concentração de espermatozóides de tambaqui através de câmara de Neubauer e espectrofotômetro, assim como analisar as características cinéticas de sêmen de Tambaqui, C. macropomum (Curvier, 1818), criopreservado em criosoluções a base de ACP 104® ou solução de Ringer, através da análise de sêmen auxiliado por computador (CASA). Foram utilizados 26 machos com idade média de três anos, pertencentes ao Centro de Pesquisas em Aqüicultura (CPAq) do Departamento Nacional de Obras Contra às Secas (DNOCS), devidamente identificados com chips magnéticos. A análise através do (CASA) foi usada para avaliar os efeitos da criopreservação na motilidade dos espermatozóides do tambaqui, diluído em água de coco em pó (ACP-104) e em Ringer modificado para peixes, com dois crioprotetores DMSO e Metilglicol, na concentração de 10%, em três diluições de sêmen (1:3, 1:4 e 1:5) para cada solução contendo diluidor e crioprotetor. Foram avaliados os percentuais de espermatozóides móveis e estáticos, bem como os parâmetros de motilidade espermática e velocidades curvilinear (VCL), velocidade em linha reta (VSL), velocidade média (VAP) e linearidade (LIN), nos diferentes meios e diluições, descongelados 15 dias após congelamento. Encontrou-se os seguintes dados seminais para o sêmen coletado do grupo I e NI, nessa ordem: volume médio de 5,05 mL e 0,55 mL (p<0,05); pH médio de 8,21 e 8,09 (p> 0,05); osmolaridade média de 320,51 e 323 mOsm/Kg (p> 0,05) e concentração espermática média de 22,93 x 109 e 40,46 x 109 sptz/mL (p<0,05). A produção espermática total foi de 115,79 x 109 sptz/mL no grupo I sendo de 22,25 x 109 sptz/mL no grupo NI. A concentração espermática individual variou de 11,40 a 71,13x109 espermatozóides/mL. A avaliação da concentração espermática, por espectrofotometria (λ=540nm) mostrou variação de transmitância de 95% a 62,1%, além de uma forte correlação negativa, entre a concentração espermática em câmara de Neubauer e a transmitância a 540 nm. A mensuração da concentração gerou equação Y= 100,293 - 0,509X; R2 = 0,966, (p<0,0001) SAS 2003, e se mostrou eficiente, podendo ser empregada em procedimentos de rotina em laboratório de reprodução artificial de peixes. Os resultados obtidos com o diluente à base de água de coco em pó (ACP-104) se mostraram superiores em relação ao meio Ringer em relação à quantidade de espermatozóides móveis, (45,63%±3,58 e 30,64%±2,67, respectivamente, p<0,05) e quando se comparou os dois diluidores com os crioprotetores DMSO (dimetilsufóxido) e metilglicol, o ACP-104 também mostrou resultados superiores aos obtidos com a solução de Ringer (56,18%±5,29 e 34,52%±3,49, respectivamente, (p<0,05). Diante do exposto conclui-se que a indução hormonal se faz necessária para facilitar a manipulação seminal no tambaqui, não alterando as características do sêmen do mesmo. A determinação da concentração espermática através da espectrofotometria (λ= 540nm) nesta espécie é eficiente. Os resultados encontrados nesse estudo mostraram a superioridade do ACP-104® como meio diluente para criopreservação do sêmen do tambaqui, sendo, portanto, indicado para a criopreservação nesta espécie. Palavras chaves: Peixe. Tambaqui. CASA. Criopreservação. Água de coco em pó. ACP. </div><div style="">The present thesis had the objective to evaluate the spermatic characteristics of tambaqui, C. macropomum (Curvier, 1818) semen with (I) and without (NI) hormonal induction, by a period of twelve months, formulate the concentration curve of tambaqui sperm by Neubauer chamber and spectrophotometer, as well as analyze the kinetic characteristics of tambaqui semen cryopreserved in extenders based on ACP 104® or Ringer solution, through the sperm analysis assisted by computer (CASA). In this work were utilized 26 males with an average age of three years, belonging to Research Center in Aquaculture (CPAq) of the National Department of Works Against the Droughts (DNOCS) and identified by magnetic chips. The CASA system analysis was used to evaluate the cryopreservation effects on sperm motility diluted in powder coconut water (ACP-104 ) solution and Ringer solution modified for fish, associated with two cryoprotectors Dimethyl sulfoxide (DMSO) and Methyl glycol, in concentrations of 10%, and three dilutions rates semen: extender (1:3, 1:4 and 1:5). The analysis evaluated the percentage of motile spermatozoa, as well as the velocity parameters as curvilinear velocity (VCL), straight line velocity (VSL), average path velocity (VAP) and linearity (LIN), in the different dilutions medium and thawed 15 days after storage. The results showed the following average seminal characteristics in the groups I and NI in that order: volume of 5.05 mL and 0.55 mL (p<0,05); pH of 8,21 and 8,09 (p> 0,05); osmolarity of 320.51 and 323 mOsm/kg (p> 0.05) and spermatic concentration of 22.93 x 109 and 40.46 x 109 sptz/ml (p<0,05). The total spermatic production was 115.79 x 109 sptz/ml in the I group and 22.25 x 109 sptz/mL in the group NI. The individual sperm concentration varied of 11.40 to 71,13x109 spermatozoa/ml. The sperm concentration analysis by spectrophotometer (λ=540nm) showed transmittance in the range of 95% to 62,1%. A strong negative correlation was observed between the spermatic concentration in Neubauer chamber and transmittance in 540 nm. The measurement of sperm concentration generated the equation Y=100,293 - 0,509X; R2 = 0.966, (p<0,0001) SAS 2003. The results obtained with extenders based on powdered coconut milk (ACP-104) were higher than Ringer solution in relation to motile spermatozoa quantity (45,63%±3,58 and 30,64%±2,67), respectively, (p<0,05) and when compared the two diluents with the cryoprotectors DMSO (dimetilsufóxido) and metilglicol, the ACP-104 also showed results higher than obtained with Ringer solution (56,18%±5,29 and 34,52%±3,49, respectively, p<0,05). This work concluded that the hormonal induction is necessary to facilitate the manipulation the tambaqui semen. Moreover, the hormonal induction didn't alter the seminal characteristics. The determination of spermatic concentration through spectrophotometer (λ = 540nm) is an efficient and rapid method being able to be employed in procedures of routine in laboratory of artificial reproduction of fish. The superiority of the ACP-104® as diluent for cryopreservation of tambaqui sperm in this study suggest the ACP104 can be routinely used in the cryopreservation semen of this specie. Key Words: Fish. Tambaqui. CASA. Cryopreservation. Powder coconut water. ACP. </div>Universidade Estadual do CearáCARMINDA SANDRA BRITO SALMITO VANDERLEYVIEIRA, MARCELO JOSÉ DA ASCENSÃO FEITOSA2019-09-30T19:57:55Z2010info:eu-repo/semantics/publishedVersioninfo:eu-repo/semantics/doctoralThesisapplication/pdfhttps://siduece.uece.br/siduece/trabalhoAcademicoPublico.jsf?id=92524info:eu-repo/semantics/openAccessporreponame:Repositório Institucional da UECEinstname:Universidade Estadual do Cearáinstacron:UECE2019-09-30T19:57:55Zoai:uece.br:92524Repositório InstitucionalPUBhttps://siduece.uece.br/siduece/api/oai/requestopendoar:2019-09-30T19:57:55Repositório Institucional da UECE - Universidade Estadual do Cearáfalse |
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