Otimização de tecnologia de sequenciamento nanopore para detecção rápida de genes de resistência a β-lactâmicos de importância clínica
| Ano de defesa: | 2024 |
|---|---|
| Autor(a) principal: | |
| Orientador(a): | |
| Banca de defesa: | |
| Tipo de documento: | Dissertação |
| Tipo de acesso: | Acesso aberto |
| Idioma: | por |
| Instituição de defesa: |
Biblioteca Digitais de Teses e Dissertações da USP
|
| Programa de Pós-Graduação: |
Não Informado pela instituição
|
| Departamento: |
Não Informado pela instituição
|
| País: |
Não Informado pela instituição
|
| Palavras-chave em Português: | |
| Link de acesso: | https://www.teses.usp.br/teses/disponiveis/17/17136/tde-25092024-091148/ |
Resumo: | Atualmente uma crise médica global se desenrola à medida que antibióticos perdem a sua eficácia contra o número crescente de bactérias multirresistentes. Sem a introdução de novos quimioterápicos no mercado, a resistência a antibióticos é uma ameaça que resulta em consequências críticas na terapêutica médica, economia e nas taxas de mortalidade e morbidade em todo o mundo. O emprego exacerbado de antibióticos entrementes a pandemia de COVID-19 pode aumentar o impacto da situação alarmante vigente das terapias de infecções bacterianas. Abordagens metagenômicas são métodos independentes de cultura que permitem ampla investigação do resistoma contornando desvantagens oferecidas por métodos convencionais, possibilitando a identificação dos genes de resistência de forma rápida e viável.O sequenciamento por nanopore apresenta inúmeras vantagens como a facilidade do manejo e transporte do aparelho, fácil e rápida preparação da amostra, retorno rápido em temporeal da análise dos dados e baixo custo, podendo atuar no rápido diagnóstico como também no monitoramento da microbiota humana para identificação precoce do resistoma bacteriano. Dado o contexto, o objetivo do presente estudo foi otimizar ferramenta para detecção de genes de resistência antimicrobiana, utilizando tecnologia de sequenciamento de nanopore MinION. A primeira etapa do estudo envolveu a padronização de nove reações distintas de PCR multiplex para detecção de genes relevantes de resistência aos β-lactâmicos, conforme indicado pela presença de bandas em gel de agarose a 1,5%. Posteriormente, essas nove reações foram consolidadas em duas reações baseadas na determinação das concentrações ideais de primers e na identificação de gradientes e ciclos de temperatura comuns. Em seguida, para validação, foram criados ambientes metagenômicos artificiais para simular cenários com alta prevalência de genes de resistência, bem como ambientes com mínima ou nenhuma presença dos genes. Os produtos dessas reações de PCR no ambiente metagenômico sintético foram submetidos ao sequenciamento Nanopore por alvo usando um sequenciador MinION. Após análise dos dados, concluiu-se que a otimização permitiu padronizar o uso da tecnologia de sequenciamento nanoporo por alvo com potencial detecção de 101 genes de resistência aos β-lactâmicos em no mínimo 8 horas e 30 minutos e no máximo 12 horas. Isto representa uma redução significativa no tempo necessário para a detecção, em contraste com as 48 a 72 horas necessárias aos método de cultura tradicional utilizado nas clínicas para os resultados. Em bora ainda sejam necessárias análises adicionais para explorar o potencial desta estratégia, o estudo produziu uma prova de conceito utilizando de tecnologia de sequenciamento que, além de procedimento otimizado, possui uma ampla gama de aplicações clínicas, garantindo amplos benefícios. Ao validar técnica que garante a rápida detecção de genes de resistência a antimicrobianos, a prova de conceito tem potencial para melhorar o diagnóstico clínico e o monitoramento da resistência, contribuindo para melhores prognósticos, propostas de políticas e respostas de prevenção para o controle de infecções causadas por microrganismos multirresistentes. |
| id |
USP_c43740b1f29de4e0d73cf7bde42b7cd3 |
|---|---|
| oai_identifier_str |
oai:teses.usp.br:tde-25092024-091148 |
| network_acronym_str |
USP |
| network_name_str |
Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da USP |
| repository_id_str |
|
| spelling |
Otimização de tecnologia de sequenciamento nanopore para detecção rápida de genes de resistência a β-lactâmicos de importância clínicaRapid detection of clinically significant β-lactam resistance genes through optimization of nanopore sequencing technologyβ-lactamasesβlactamasesDiagnosisDiagnósticoMicrobiotaMicrobiotaNanopore sequencingSequenciamento nanoporeAtualmente uma crise médica global se desenrola à medida que antibióticos perdem a sua eficácia contra o número crescente de bactérias multirresistentes. Sem a introdução de novos quimioterápicos no mercado, a resistência a antibióticos é uma ameaça que resulta em consequências críticas na terapêutica médica, economia e nas taxas de mortalidade e morbidade em todo o mundo. O emprego exacerbado de antibióticos entrementes a pandemia de COVID-19 pode aumentar o impacto da situação alarmante vigente das terapias de infecções bacterianas. Abordagens metagenômicas são métodos independentes de cultura que permitem ampla investigação do resistoma contornando desvantagens oferecidas por métodos convencionais, possibilitando a identificação dos genes de resistência de forma rápida e viável.O sequenciamento por nanopore apresenta inúmeras vantagens como a facilidade do manejo e transporte do aparelho, fácil e rápida preparação da amostra, retorno rápido em temporeal da análise dos dados e baixo custo, podendo atuar no rápido diagnóstico como também no monitoramento da microbiota humana para identificação precoce do resistoma bacteriano. Dado o contexto, o objetivo do presente estudo foi otimizar ferramenta para detecção de genes de resistência antimicrobiana, utilizando tecnologia de sequenciamento de nanopore MinION. A primeira etapa do estudo envolveu a padronização de nove reações distintas de PCR multiplex para detecção de genes relevantes de resistência aos β-lactâmicos, conforme indicado pela presença de bandas em gel de agarose a 1,5%. Posteriormente, essas nove reações foram consolidadas em duas reações baseadas na determinação das concentrações ideais de primers e na identificação de gradientes e ciclos de temperatura comuns. Em seguida, para validação, foram criados ambientes metagenômicos artificiais para simular cenários com alta prevalência de genes de resistência, bem como ambientes com mínima ou nenhuma presença dos genes. Os produtos dessas reações de PCR no ambiente metagenômico sintético foram submetidos ao sequenciamento Nanopore por alvo usando um sequenciador MinION. Após análise dos dados, concluiu-se que a otimização permitiu padronizar o uso da tecnologia de sequenciamento nanoporo por alvo com potencial detecção de 101 genes de resistência aos β-lactâmicos em no mínimo 8 horas e 30 minutos e no máximo 12 horas. Isto representa uma redução significativa no tempo necessário para a detecção, em contraste com as 48 a 72 horas necessárias aos método de cultura tradicional utilizado nas clínicas para os resultados. Em bora ainda sejam necessárias análises adicionais para explorar o potencial desta estratégia, o estudo produziu uma prova de conceito utilizando de tecnologia de sequenciamento que, além de procedimento otimizado, possui uma ampla gama de aplicações clínicas, garantindo amplos benefícios. Ao validar técnica que garante a rápida detecção de genes de resistência a antimicrobianos, a prova de conceito tem potencial para melhorar o diagnóstico clínico e o monitoramento da resistência, contribuindo para melhores prognósticos, propostas de políticas e respostas de prevenção para o controle de infecções causadas por microrganismos multirresistentes.The absence of novel chemotherapeutic agents entering the market exacerbates the imminent threat of antibiotic resistance, posing a grave risk with far-reaching consequences for global public health, the world economy, and the field of medical treatment. The intensified use of antibiotics during the course of the COVID-19 pandemic may increase the impact of the current alarming situation of therapies for bacterial infections. Metagenomic approaches are culture-independent methods that allow extensive investigation of the resistome, by passing disadvantages offered by conventional microbiological methods enabling the identification of resistance genes in a fast and viable way. Nanopore sequencing has numerous advantages such as ease of handling and transport of the device, easy and fast sample preparation, fastreal-time feedback on data analysis and low cost, enabling the protocol to act in the rapid diagnosis along with the monitoring of the human microbiota for early identification of agents belonging to the bacterial resistome. Given the above context, the objective of the current study was optimizing a tool for detecting antimicrobial resistance genes using MinION nanopore sequencing technology. The first stage of the study involved standardizing nine distinct multiplex PCR reactions to target relevant β-lactam resistance genes, as indicated by the presence of bands in a 1.5% agarose gel. Subsequently, these nine reactions were consolidated into two reactions based on determining ideal primer concentrations and identifying common temperature gradients and cycles. Then, to validation process, artificial metagenomic environments was created to simulate scenarios with a high prevalence of resistance genes, as well as environments with minimal or no presence of the genes. The products of these PCR reactions in the synthetic metagenomic environment were subjected to Nanopore targeted sequencing using a MinION nanopore sequencer. After the data analysis, the optimization allowed standardizing the use of nanopore target sequencing technology with potential detection of 101 β-lactam resistance genes in minimum of as 8 hours and 30 minutes, and a maximum of 12 hours. This represents a significant reduction in the amount of time needed for detection, in contrast to the 48 to 72 hours needed by the traditional culture method used in clinics for the results. Although further analysis is still required to fully explore the potential of this strategy, the study produced a proof of concept using a sequencing technology that, in addition to optimized procedure, has a wide range clinical applications, ensuring broad benefits. By validating a technique that ensures the rapid detection of antimicrobial resistance genes, the proof of concept have potencial for enhance clinical diagnoses and resistance monitoring, contributing to improved prognoses, policyproposals, and prevention responses for controlling infections caused by multi-resistant microorganisms.Biblioteca Digitais de Teses e Dissertações da USPGuazzaroni, María EugeniaSouza, Gabrielle Messias de2024-06-21info:eu-repo/semantics/publishedVersioninfo:eu-repo/semantics/masterThesisapplication/pdfhttps://www.teses.usp.br/teses/disponiveis/17/17136/tde-25092024-091148/reponame:Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da USPinstname:Universidade de São Paulo (USP)instacron:USPReter o conteúdo por motivos de patente, publicação e/ou direitos autoriais.info:eu-repo/semantics/openAccesspor2024-11-08T18:57:02Zoai:teses.usp.br:tde-25092024-091148Biblioteca Digital de Teses e Dissertaçõeshttp://www.teses.usp.br/PUBhttp://www.teses.usp.br/cgi-bin/mtd2br.plvirginia@if.usp.br|| atendimento@aguia.usp.br||virginia@if.usp.bropendoar:27212024-11-08T18:57:02Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da USP - Universidade de São Paulo (USP)false |
| dc.title.none.fl_str_mv |
Otimização de tecnologia de sequenciamento nanopore para detecção rápida de genes de resistência a β-lactâmicos de importância clínica Rapid detection of clinically significant β-lactam resistance genes through optimization of nanopore sequencing technology |
| title |
Otimização de tecnologia de sequenciamento nanopore para detecção rápida de genes de resistência a β-lactâmicos de importância clínica |
| spellingShingle |
Otimização de tecnologia de sequenciamento nanopore para detecção rápida de genes de resistência a β-lactâmicos de importância clínica Souza, Gabrielle Messias de β-lactamases βlactamases Diagnosis Diagnóstico Microbiota Microbiota Nanopore sequencing Sequenciamento nanopore |
| title_short |
Otimização de tecnologia de sequenciamento nanopore para detecção rápida de genes de resistência a β-lactâmicos de importância clínica |
| title_full |
Otimização de tecnologia de sequenciamento nanopore para detecção rápida de genes de resistência a β-lactâmicos de importância clínica |
| title_fullStr |
Otimização de tecnologia de sequenciamento nanopore para detecção rápida de genes de resistência a β-lactâmicos de importância clínica |
| title_full_unstemmed |
Otimização de tecnologia de sequenciamento nanopore para detecção rápida de genes de resistência a β-lactâmicos de importância clínica |
| title_sort |
Otimização de tecnologia de sequenciamento nanopore para detecção rápida de genes de resistência a β-lactâmicos de importância clínica |
| author |
Souza, Gabrielle Messias de |
| author_facet |
Souza, Gabrielle Messias de |
| author_role |
author |
| dc.contributor.none.fl_str_mv |
Guazzaroni, María Eugenia |
| dc.contributor.author.fl_str_mv |
Souza, Gabrielle Messias de |
| dc.subject.por.fl_str_mv |
β-lactamases βlactamases Diagnosis Diagnóstico Microbiota Microbiota Nanopore sequencing Sequenciamento nanopore |
| topic |
β-lactamases βlactamases Diagnosis Diagnóstico Microbiota Microbiota Nanopore sequencing Sequenciamento nanopore |
| description |
Atualmente uma crise médica global se desenrola à medida que antibióticos perdem a sua eficácia contra o número crescente de bactérias multirresistentes. Sem a introdução de novos quimioterápicos no mercado, a resistência a antibióticos é uma ameaça que resulta em consequências críticas na terapêutica médica, economia e nas taxas de mortalidade e morbidade em todo o mundo. O emprego exacerbado de antibióticos entrementes a pandemia de COVID-19 pode aumentar o impacto da situação alarmante vigente das terapias de infecções bacterianas. Abordagens metagenômicas são métodos independentes de cultura que permitem ampla investigação do resistoma contornando desvantagens oferecidas por métodos convencionais, possibilitando a identificação dos genes de resistência de forma rápida e viável.O sequenciamento por nanopore apresenta inúmeras vantagens como a facilidade do manejo e transporte do aparelho, fácil e rápida preparação da amostra, retorno rápido em temporeal da análise dos dados e baixo custo, podendo atuar no rápido diagnóstico como também no monitoramento da microbiota humana para identificação precoce do resistoma bacteriano. Dado o contexto, o objetivo do presente estudo foi otimizar ferramenta para detecção de genes de resistência antimicrobiana, utilizando tecnologia de sequenciamento de nanopore MinION. A primeira etapa do estudo envolveu a padronização de nove reações distintas de PCR multiplex para detecção de genes relevantes de resistência aos β-lactâmicos, conforme indicado pela presença de bandas em gel de agarose a 1,5%. Posteriormente, essas nove reações foram consolidadas em duas reações baseadas na determinação das concentrações ideais de primers e na identificação de gradientes e ciclos de temperatura comuns. Em seguida, para validação, foram criados ambientes metagenômicos artificiais para simular cenários com alta prevalência de genes de resistência, bem como ambientes com mínima ou nenhuma presença dos genes. Os produtos dessas reações de PCR no ambiente metagenômico sintético foram submetidos ao sequenciamento Nanopore por alvo usando um sequenciador MinION. Após análise dos dados, concluiu-se que a otimização permitiu padronizar o uso da tecnologia de sequenciamento nanoporo por alvo com potencial detecção de 101 genes de resistência aos β-lactâmicos em no mínimo 8 horas e 30 minutos e no máximo 12 horas. Isto representa uma redução significativa no tempo necessário para a detecção, em contraste com as 48 a 72 horas necessárias aos método de cultura tradicional utilizado nas clínicas para os resultados. Em bora ainda sejam necessárias análises adicionais para explorar o potencial desta estratégia, o estudo produziu uma prova de conceito utilizando de tecnologia de sequenciamento que, além de procedimento otimizado, possui uma ampla gama de aplicações clínicas, garantindo amplos benefícios. Ao validar técnica que garante a rápida detecção de genes de resistência a antimicrobianos, a prova de conceito tem potencial para melhorar o diagnóstico clínico e o monitoramento da resistência, contribuindo para melhores prognósticos, propostas de políticas e respostas de prevenção para o controle de infecções causadas por microrganismos multirresistentes. |
| publishDate |
2024 |
| dc.date.none.fl_str_mv |
2024-06-21 |
| dc.type.status.fl_str_mv |
info:eu-repo/semantics/publishedVersion |
| dc.type.driver.fl_str_mv |
info:eu-repo/semantics/masterThesis |
| format |
masterThesis |
| status_str |
publishedVersion |
| dc.identifier.uri.fl_str_mv |
https://www.teses.usp.br/teses/disponiveis/17/17136/tde-25092024-091148/ |
| url |
https://www.teses.usp.br/teses/disponiveis/17/17136/tde-25092024-091148/ |
| dc.language.iso.fl_str_mv |
por |
| language |
por |
| dc.relation.none.fl_str_mv |
|
| dc.rights.driver.fl_str_mv |
Reter o conteúdo por motivos de patente, publicação e/ou direitos autoriais. info:eu-repo/semantics/openAccess |
| rights_invalid_str_mv |
Reter o conteúdo por motivos de patente, publicação e/ou direitos autoriais. |
| eu_rights_str_mv |
openAccess |
| dc.format.none.fl_str_mv |
application/pdf |
| dc.coverage.none.fl_str_mv |
|
| dc.publisher.none.fl_str_mv |
Biblioteca Digitais de Teses e Dissertações da USP |
| publisher.none.fl_str_mv |
Biblioteca Digitais de Teses e Dissertações da USP |
| dc.source.none.fl_str_mv |
reponame:Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da USP instname:Universidade de São Paulo (USP) instacron:USP |
| instname_str |
Universidade de São Paulo (USP) |
| instacron_str |
USP |
| institution |
USP |
| reponame_str |
Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da USP |
| collection |
Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da USP |
| repository.name.fl_str_mv |
Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da USP - Universidade de São Paulo (USP) |
| repository.mail.fl_str_mv |
virginia@if.usp.br|| atendimento@aguia.usp.br||virginia@if.usp.br |
| _version_ |
1818598508209373184 |