Desenvolvimento de fases biocompatíveis para microextração em fase sólida e aplicações de suas variantes in-tube e in vivo na determinação de biomarcadores de doenças neurodegenerativas por LC-MS/MS
| Ano de defesa: | 2025 |
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Biblioteca Digitais de Teses e Dissertações da USP
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Resumo: | A cromatografia líquida acoplada à espectrometria de massas (LC-MS) tem sido a técnica analítica de referência para a determinação de biomarcadores de doenças neurodegenerativas, como o Parkinson (DP) e Alzheimer (DA), em amostras biológicas. Entretanto, dada a complexidade dessas amostras, a etapa de preparo de amostras é requerida. Nesse contexto, destacam-se a microextração em fase sólida (SPME) e suas variantes in-tube SPME e in vivo SPME, como técnicas não-exaustivas de preparo de amostras que integram a amostragem, extração e pré-concentração em uma única etapa. Nestas técnicas, uma pequena quantidade de sorvente é imobilizado em suporte sólido (dispositivo SPME), que é exposto à amostra, sendo a extração baseada no equilíbrio de partição dos analitos entre a amostra e o sorvente. Nesta tese diferentes fases biocompatíveis foram desenvolvidas para uso em SPME associado a GC ou LC, com ênfase na determinação de biomarcadores de doenças neurodegenerativas em amostras biológicas. No Capítulo 1, os fundamentos teóricos da SPME foram apresentados, assim como as definições de biomarcadores. No capítulo 2 o desenvolvimento de novos dispositivos SPME biocompatíveis revestidos com nanotubos de carbono (CNTs) combinados com polibenzimidazol (PBI) foi apresentado. Estes dispositivos SPME apresentaram alta estabilidade mecânica, química e térmica em análises LC-MS e/ou GC-MS. Na análise de benzeno, tolueno, etilbenzeno e o-xileno, o revestimento CNT-PBI inovador, quando comparado aos revestimentods de carboxen-polidimetilsiloxano (CAR-PDMS) e de CAR-PBI, apresentou melhor performance, considerando a eficiência da extração. Nas análises de drogas de abuso não polares por LC-MS, o revestimento CNT-PBI apresentou extrações mais eficientes quando comparado ao revestimento preparado com o binder convencional poliacrilonitrila (CNT-PAN), além de obter performance comparável ao revestimento de C18-PAN. Nas análises untargeted de amostras de água utilizando lâminas revestidas com CNT-PBI e CNT-PAN, os binders (PBI e PAN) demonstraram influência significativa na capacidade de extração dos materiais. No Capítulo 3 foi apresentado o desenvolvimento de um capilar com nova fase monolítica orgânica de troca aniônica de acesso restrito, utilizado como dispositivo de extração para in-tube SPME, para a determinação de homocisteína (Hcy) e ácido homocisteico (HCA), potenciais biomarcadores da DA, em amostras de liquido cefalorraquidiano (LCR). A fase desenvolvida apresentou extração seletiva dos analitos e exclusão simultânea de cerca de 90 % das macromoléculas (proteínas) da matriz. A otimização dos parâmetros da in-tube SPME favoreceram a eficiência de extração. O método proposto apresentou faixa de linearidade de 8 a 250 ng mL-1 para Hcy e de 5 a 150 ng mL-1 para HCA, com adequados valores de precisão e exatidão, além de efeito matriz não significativo. Este método foi aplicado em estudo clínico para análises de amostras de LCR de pacientes com a DA, com comprometimento cognitivo leve (CCL) e de voluntários do grupo controle. Foi observado um aumento significativo nas concentrações de Hcy nos grupos AD (p = 0,0487) e CCL (p = 0,0022) em comparação ao grupo controle, demonstrando o potencial desse analito como biomarcador da DA. No capítulo 4, o método in vivo SPME, com fibras biocompatíveis revestidas com partículas de balanço hidrofílico-lipofílico (HLB-PAN, 5 mm, 12 µm) foi desenvolvido para a determinação dos endocanabinóides anandamida (AEA) e 2-araquidonoilglicerol (2-AG) em encéfalo de ratos. A extração foi realizada em condições de depleção negligenciável, fazendo uso de volume reduzido de fase extratora, de modo a possibilitar a determinação quantitativa das concentrações livres e totais dos analitos. O tempo de equilíbrio foi definido como 15 minutos para ambos os analitos. Para as determinações das concentrações livres foram determinados os coeficientes de distribuição (Kfs) dos analitos, com valores iguais a 10500 e 7300 para AEA e 2-AG, respectivamente. Para determinação das concentrações totais, foi determinada a porcentagem de ligação dos analitos à matriz (MB %), sendo igual a 99% para ambos. O método in vivo SPME foi aplicado com êxito na determinação das concentrações de AEA, na região do estriado, em um modelo animal da DP, revelando um aumento significativo das concentrações de AEA nos animais parkinsonianos em relação aos animais controle, com concentrações livres iguais a 0,57 ng mL-1 e 0,45 ng mL-1, respectivamente. |
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Desenvolvimento de fases biocompatíveis para microextração em fase sólida e aplicações de suas variantes in-tube e in vivo na determinação de biomarcadores de doenças neurodegenerativas por LC-MS/MSDevelopment of biocompatible phases for solid-phase microextraction and applications of its in-tube and in vivo variants in the determination of biomarkers of neurodegenerative diseases by LC-MS/MSin vivo SPMEin vivo SPMEin-tube SPMEin-tube SPMEBiomarcadoresBiomarkersCarbon nanotubesDoenças neurodegenerativasEndocanabinóidesEndocannabinoidsHomocisteínaHomocysteineMicroextração em fase sólidaNanotubos de carbonoNeurodegenerative diseasesSolid-phase microextractionA cromatografia líquida acoplada à espectrometria de massas (LC-MS) tem sido a técnica analítica de referência para a determinação de biomarcadores de doenças neurodegenerativas, como o Parkinson (DP) e Alzheimer (DA), em amostras biológicas. Entretanto, dada a complexidade dessas amostras, a etapa de preparo de amostras é requerida. Nesse contexto, destacam-se a microextração em fase sólida (SPME) e suas variantes in-tube SPME e in vivo SPME, como técnicas não-exaustivas de preparo de amostras que integram a amostragem, extração e pré-concentração em uma única etapa. Nestas técnicas, uma pequena quantidade de sorvente é imobilizado em suporte sólido (dispositivo SPME), que é exposto à amostra, sendo a extração baseada no equilíbrio de partição dos analitos entre a amostra e o sorvente. Nesta tese diferentes fases biocompatíveis foram desenvolvidas para uso em SPME associado a GC ou LC, com ênfase na determinação de biomarcadores de doenças neurodegenerativas em amostras biológicas. No Capítulo 1, os fundamentos teóricos da SPME foram apresentados, assim como as definições de biomarcadores. No capítulo 2 o desenvolvimento de novos dispositivos SPME biocompatíveis revestidos com nanotubos de carbono (CNTs) combinados com polibenzimidazol (PBI) foi apresentado. Estes dispositivos SPME apresentaram alta estabilidade mecânica, química e térmica em análises LC-MS e/ou GC-MS. Na análise de benzeno, tolueno, etilbenzeno e o-xileno, o revestimento CNT-PBI inovador, quando comparado aos revestimentods de carboxen-polidimetilsiloxano (CAR-PDMS) e de CAR-PBI, apresentou melhor performance, considerando a eficiência da extração. Nas análises de drogas de abuso não polares por LC-MS, o revestimento CNT-PBI apresentou extrações mais eficientes quando comparado ao revestimento preparado com o binder convencional poliacrilonitrila (CNT-PAN), além de obter performance comparável ao revestimento de C18-PAN. Nas análises untargeted de amostras de água utilizando lâminas revestidas com CNT-PBI e CNT-PAN, os binders (PBI e PAN) demonstraram influência significativa na capacidade de extração dos materiais. No Capítulo 3 foi apresentado o desenvolvimento de um capilar com nova fase monolítica orgânica de troca aniônica de acesso restrito, utilizado como dispositivo de extração para in-tube SPME, para a determinação de homocisteína (Hcy) e ácido homocisteico (HCA), potenciais biomarcadores da DA, em amostras de liquido cefalorraquidiano (LCR). A fase desenvolvida apresentou extração seletiva dos analitos e exclusão simultânea de cerca de 90 % das macromoléculas (proteínas) da matriz. A otimização dos parâmetros da in-tube SPME favoreceram a eficiência de extração. O método proposto apresentou faixa de linearidade de 8 a 250 ng mL-1 para Hcy e de 5 a 150 ng mL-1 para HCA, com adequados valores de precisão e exatidão, além de efeito matriz não significativo. Este método foi aplicado em estudo clínico para análises de amostras de LCR de pacientes com a DA, com comprometimento cognitivo leve (CCL) e de voluntários do grupo controle. Foi observado um aumento significativo nas concentrações de Hcy nos grupos AD (p = 0,0487) e CCL (p = 0,0022) em comparação ao grupo controle, demonstrando o potencial desse analito como biomarcador da DA. No capítulo 4, o método in vivo SPME, com fibras biocompatíveis revestidas com partículas de balanço hidrofílico-lipofílico (HLB-PAN, 5 mm, 12 µm) foi desenvolvido para a determinação dos endocanabinóides anandamida (AEA) e 2-araquidonoilglicerol (2-AG) em encéfalo de ratos. A extração foi realizada em condições de depleção negligenciável, fazendo uso de volume reduzido de fase extratora, de modo a possibilitar a determinação quantitativa das concentrações livres e totais dos analitos. O tempo de equilíbrio foi definido como 15 minutos para ambos os analitos. Para as determinações das concentrações livres foram determinados os coeficientes de distribuição (Kfs) dos analitos, com valores iguais a 10500 e 7300 para AEA e 2-AG, respectivamente. Para determinação das concentrações totais, foi determinada a porcentagem de ligação dos analitos à matriz (MB %), sendo igual a 99% para ambos. O método in vivo SPME foi aplicado com êxito na determinação das concentrações de AEA, na região do estriado, em um modelo animal da DP, revelando um aumento significativo das concentrações de AEA nos animais parkinsonianos em relação aos animais controle, com concentrações livres iguais a 0,57 ng mL-1 e 0,45 ng mL-1, respectivamente.Liquid chromatography coupled with mass spectrometry (LC-MS) has been the reference analytical technique for determining biomarkers of neurodegenerative diseases, such as Parkinson\'s disease (PD) and Alzheimer\'s disease (AD), in biological samples. However, due to the complexity of these samples, a sample preparation step is required. In this context, solid-phase microextraction (SPME) and its variants, in-tube SPME and in vivo SPME, stand out as non-exhaustive sample preparation techniques that integrate sampling, extraction, and preconcentration into a single step. In these techniques, a small amount of sorbent is immobilized on a solid support (SPME device), which is then exposed to the sample. The extraction is based on the partition equilibrium of analytes between the sample and the sorbent. In this thesis, different biocompatible phases were developed for use in SPME combined with GC or LC, with a focus on determining biomarkers of neurodegenerative diseases in biological samples. Chapter 1 presents the theoretical foundations of SPME, as well as the definitions of biomarkers. Chapter 2 describes the development of novel biocompatible SPME devices coated with carbon nanotubes (CNTs) combined with polybenzimidazole (PBI). These SPME devices exhibited high mechanical, chemical, and thermal stability in LC-MS and/or GC-MS analyses. When analyzing benzene, toluene, ethylbenzene, and o-xylene, the innovative CNT-PBI coating outperformed carboxen-polydimethylsiloxane (CAR-PDMS) and CAR-PBI coatings in extraction efficiency. For non-polar drugs of abuse analyzed by LC-MS, the CNT-PBI coating demonstrated more efficient extractions compared to the conventional polyacrylonitrile (CNT-PAN) binder, while also achieving performance comparable to the C18-PAN coating. In untargeted analyses of water samples using CNT-PBI- and CNT-PAN-coated blades, the binders (PBI and PAN) significantly influenced the extraction capabilities of the materials. Chapter 3 presents the development of a capillary containing a novel anion-exchange restricted-access organic monolithic phase, used as an extraction device for in-tube SPME to determine homocysteine (Hcy) and homocysteic acid (HCA) - potential biomarkers of AD - in cerebrospinal fluid (CSF) samples. The developed phase enabled selective extraction of the analytes while simultaneously excluding approximately 90% of macromolecules (proteins) from the matrix. Optimization of in-tube SPME parameters enhanced extraction efficiency. The proposed method exhibited a linear range of 8 - 250 ng mL-1 for Hcy and 5 - 150 ng mL-1 for HCA, with appropriate precision and accuracy values and no significant matrix effect. This method was applied in a clinical study analyzing CSF samples from AD patients, individuals with mild cognitive impairment (MCI), and control group volunteers. A significant increase in Hcy concentrations was observed in the AD (p = 0.0487) and MCI (p = 0.0022) groups compared to the control group, demonstrating the potential of this analyte as an AD biomarker. In Chapter 4, an in vivo SPME method using biocompatible fibers coated with hydrophilic-lipophilic balance (HLB-PAN, 5 mm, 12 µm) particles was developed for the determination of the endocannabinoids anandamide (AEA) and 2-arachidonoylglycerol (2-AG) in rat brain. Extraction was performed under negligible depletion conditions, using a reduced extraction phase volume to enable the quantitative determination of both free and total analyte concentrations. The equilibrium time was set at 15 minutes for both analytes. For free concentration determination, the distribution coefficients (Kfs) were calculated, with values of 10,500 and 7,300 for AEA and 2-AG, respectively. For total concentration determination, the analyte binding percentage to the matrix (MB%) was determined, reaching 99% for both analytes. The in vivo SPME method was successfully applied to determine AEA concentrations in the striatum region of a PD animal model, revealing a significant increase in AEA levels in parkinsonian animals compared to control animals, with free concentrations of 0.57 ng mL-1 and 0.45 ng mL-1, respectively.Biblioteca Digitais de Teses e Dissertações da USPNassur, Maria Eugenia QueirozOliveira, Igor Gustavo de Carvalho2025-05-09info:eu-repo/semantics/publishedVersioninfo:eu-repo/semantics/doctoralThesisapplication/pdfhttps://www.teses.usp.br/teses/disponiveis/59/59138/tde-05062025-111055/reponame:Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da USPinstname:Universidade de São Paulo (USP)instacron:USPReter o conteúdo por motivos de patente, publicação e/ou direitos autoriais.info:eu-repo/semantics/openAccesspor2025-06-23T19:41:01Zoai:teses.usp.br:tde-05062025-111055Biblioteca Digital de Teses e Dissertaçõeshttp://www.teses.usp.br/PUBhttp://www.teses.usp.br/cgi-bin/mtd2br.plvirginia@if.usp.br|| atendimento@aguia.usp.br||virginia@if.usp.bropendoar:27212025-06-23T19:41:01Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da USP - Universidade de São Paulo (USP)false |
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