Efeito de meios de re-diluição pós-descongelação sobre a cinética e morfologia de espermatozóides caprinos congelados em meio à base de água de coco em pó (ACP-101) ou TRIS

• Ano de defesa: 2007
• Autor(a) principal: Oliveira, Rodrigo Vasconcelos de
• Tipo de documento: Dissertação
• Tipo de acesso: Acesso aberto
• Idioma: por
• Instituição de defesa: Universidade Estadual do Ceará
• Palavras-chave em Português: Água de coco em pó; Caprinos; Ciências veterinárias; Espermatozoide
• Link de acesso: https://siduece.uece.br/siduece/trabalhoAcademicoPublico.jsf?id=46206

<div style=""><font face="Arial, Verdana"><span style="font-size: 13.3333px;">O trabalho teve como objetivos: avaliar “in vitro” o sêmen caprino congelado nos&nbsp;</span></font><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">meios diluentes à base de água de coco em pó (ACP-101) e TRIS (hidroxi-metil&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">amino metano); analisar o efeito de soluções para re-diluição seminal pósdescongelação&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">por meio de parâmetros cinéticos mensurados pelo sistema Sperm&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">Class Analyser® e; comparar a eficiência do corante azul de bromofenol (AB) com o&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">corante clássico de eosina- igrosina (EN) na avaliação morfológica do sêmen&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">caprino fresco e descongelado submetidos ao teste de termo-resistência. Foram&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">utilizados quatro bodes. Os diluentes empregados foram: ACP-101 (+ 2,5% gema&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">ovo + 7% glicerol) e TRIS (+ 20% gema ovo + 6,8% glicerol). Os ejaculados foram&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">coletados por vagina artificial, avaliados quanto a: volume, concentração, motilidade&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">massal, porcentagem de espermatozóides móveis, motilidade individual progressiva,&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">porcentagem de vivos e mortos e, alterações morfológicas. Em seguida, divididos&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">em duas alíquotas, diluídas nos tratamentos experimentais ACP-101 e TRIS. As&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">amostras foram refrigeradas até 4ºC, envasadas em palhetas, congeladas em&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">vapores de nitrogênio, armazenadas em botijão criogênico (-196ºC) e&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">descongeladas após 30 dias. As avaliações de motilidade espermática auxiliada por&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">computador foram realizadas aos 5, 60 e 120 minutos pós-descongelação. Para rediluição&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">pós-descongelação foram utilizados diluente base (DB: ACP-101 ou TRIS&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">sem gema e sem glicerol), soluções de Ringer Lactato (RL) e de NaCl a 0,9% (SF).&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">Três palhetas de cada tratamento por ejaculado avaliadas e re-diluídas, com uma&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">das três soluções de re-diluição. Os parâmetros de motilidade espermática auxiliada&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">por computador analisados foram: motilidades total (MT) (%) e progressiva (MP) (%),&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">velocidades média do trajeto do espermatozóide (VAP) (&#956;m/s) e linear (VSL) (&#956;m/s),&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">e população de espermatozóides rápidos (ER) (%). A morfologia espermática foi&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">avaliada, aos 5 e 120 minutos pós-descongelação, por meio de esfregaços corados&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">por EN e AB. Os parâmetros morfológicos avaliados foram: espermatozóides&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">normais (N), alterações de cabeça (AC), de peça intermediária (API), e de flagelo&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">(AF), gotas citoplasmáticas proximal (GCP), e distal (GCD), e cabeça destacada&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">(CD). Os dados foram submetidos à ANOVA e aos teste de Duncan e Tukey (P &lt;&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">0,05). Independentemente da variável cinética, o tratamento ACP x RL apresentouse&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">significativamente inferior durante o teste de termo-resistência. O diluente à base&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">de TRIS apresentou resultados cinéticos significativamente superiores ao ACP-101,&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">aos 60 e 120 minutos. Os espermatozóides diluídos e congelados no TRIS não&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">sofreram influência das soluções de re-diluição pós-descongelação. Não existiu&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">diferença significativa na observação de N entre tratamentos após 5 minutos do&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">teste de termo-resistência. Após 120 minutos a quantificação de N foi influenciada&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">significativamente pelo diluente, tendo o TRIS apresentado resultados superiores. O&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">período de incubação de 120 minutos a 37oC promoveu o aumento das AC. Os&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">parâmetros cinéticos, após 5 minutos de incubação a 37oC, dos espermatozóides&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">diluídos e congelados em meio à base de ACP-101 demonstram sua potencialidade&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">na criopreservação seminal de bodes. O meio diluente à base de TRIS promoveu&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">uma maior proteção quanto às crioinjúrias em espermatozóides caprinos&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">congelados. O corante azul de bromofenol demonstrou ser eficiente na avaliação do&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">sêmen caprino fresco e pós-descongelação.&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">Palavras-chave: caprinos; espermatozóides; água de coco em pó; TRIS; eosinanigrosina;&nbsp;</span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">azul de bromofenol.</span></div>