Avaliação da sensibilidade do ensaio de qPCR com o alvo 18s rDNA em amostras de sangue e biópsias de pacientes com leishmaniose cutânea e mucocutânea de região endêmica

Detalhes bibliográficos
Ano de defesa: 2024
Autor(a) principal: Castanheira, Gabriel Victor
Orientador(a): Não Informado pela instituição
Banca de defesa: Não Informado pela instituição
Tipo de documento: Dissertação
Tipo de acesso: Acesso aberto
Idioma: por
Instituição de defesa: Biblioteca Digitais de Teses e Dissertações da USP
Programa de Pós-Graduação: Não Informado pela instituição
Departamento: Não Informado pela instituição
País: Não Informado pela instituição
Palavras-chave em Português:
Link de acesso: https://www.teses.usp.br/teses/disponiveis/5/5134/tde-01072025-145625/
Resumo: Introdução: A leishmaniose tegumentar americana (LTA), uma doença infecciosa, não contagiosa, de transmissão vetorial com ciclo heteroxênico é causada pelo protozoário flagelado pertencente ao gênero Leishmania, que acomete pele e mucosas. O parasita apresenta duas formas evolutivas: promastigota, que é a forma flagelada e amastigota que é a forma aflagelada intracelular. Tem como reservatórios marsupiais, tamanduás, canídeos, roedores e primatas. O vetor da doença é o inseto do gênero Lutzomyia conhecido como mosquito palha. A doença compreende um espectro de variações clínicas, que depende da espécie de Leishmania que está causando a infecção, do sistema imunológico do indivíduo e fatores epidemiológicos. Das variações nas características clínicas, a LT é dividida da seguinte forma: Leishmaniose cutânea localizada (LCL), leishmaniose cutânea difusa (LCDf); leishmaniose cutânea disseminada (LCDs); leishmaniose mucocutânea (LMC); leishmaniose difusa (LD) e leishmaniose difusa disseminada. O diagnóstico pode ser feito por imprint do fragmento da lesão em lâmina para coloração e observação microscópica, cultura e por técnicas moleculares que possuem alvos específicos. O tratamento é feito com medicamentos antiparasitários como a Anfotericina B. Um diagnóstico precoce e menos invasivo a partir de amostras sanguíneas pode ser útil em vez das biópsias das lesões que podem causar um certo incomodo ao paciente. Portanto a PCR é fundamental na detecção e quantificação da carga parasitária. A quantificação da carga parasitária é uma estratégia de monitoramento da doença antes e durante o tratamento dos pacientes baseados nas condições diagnóstica desse método. Objetivos: Padronizar a cPCR e qPCR utilizando o alvo 18s rDNA; determinar a sensibilidade da técnica qPCR com o alvo 18s rDNA em amostras de sangue e tecido de pacientes com suspeita de leishmaniose cutânea e mucocutânea; avaliar a sensibilidade das cPCR em amostras de sangue e tecido com os alvos kDNA e 18s rDNA; avaliar a sensibilidade da qPCR in house com o alvo 18s rDNA em paralelo com o kit comercial da Viasure. Metodologia: O projeto teve início após aprovação da Comissão de Ética para Análise de Projetos de Pesquisa (CAPPesq). Foram utilizadas amostras do ambulatório de Leishmanioses da Divisão de Clínica de Moléstias Infecciosas do Hospital das Clínicas da Faculdade de Medicina da Universidade de São Paulo e do Centro de Pesquisas em Doenças infecciosas e Parasitárias do Hospital Universitário Clemente Faria, localizado em Montes Claros (MG). O número de pacientes incluídos no projeto foi um total de 46 (n=46) dos quais foram coletados dois tipos de amostras, pareadas e não pareadas; uma de sangue periférico em tubos com EDTA, biópsias cutâneas ou mucocutâneas. Essas amostras foram submetidas aos ensaios de cPCR e PCR Real-Time Sybr Green e posteriormente armazenadas no BIOBANCO do Instituto de Medicina Tropical. Foram descritos os resultados das padronizações para cada diluição com uso de médias, desvio padrão (DP) e coeficiente de variação (CV); os sexos dos pacientes foram descritos com uso de frequências absolutas e relativas e as idades e número de lesões foram descritos com uso de medidas resumo (média, desvio padrão, mediana e quartis). Os resultados dos Cts das amostras dos pacientes foram descritos com uso de medidas resumo e comparados entre cada tipo de amostra com uso de equações de estimação generalizadas (EEG) com distribuição normal e função de ligação identidade, assumindo matriz de correlações permutável entre as amostras (McCullagh e Nelder, 1989). A análise foi seguida de comparações múltiplas de Bonferroni para identificar as diferenças encontradas (Neter, et. al., 1996). Resultados da concordância da qPCR com o alvo 18s rDNA com os três tipos de amostras, positivas e negativas, em relação à triagem foi de 65,7% no sangue, 24,4% no sangue-guanidina e tecido 43,2%. Já no que diz respeito à sensibilidade, as amostras de sangue apresentaram um melhor percentual (69,2%) em relação ao tecido (50%) e sangue-guanidina (31,3%). Quanto aos verdadeiros positivos (VPP), as amostras de tecido apresentaram um percentual de probabilidade dos indivíduos estarem doentes de 87,5%, enquanto no sangue foi de 78,3%. Conclui-se então que o alvo 18s rDNA é um marcador eficaz com alta sensibilidade na detecção em sangue periférico, podendo ser utilizado tanto para pesquisa como para diagnóstico
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O vetor da doença é o inseto do gênero Lutzomyia conhecido como mosquito palha. A doença compreende um espectro de variações clínicas, que depende da espécie de Leishmania que está causando a infecção, do sistema imunológico do indivíduo e fatores epidemiológicos. Das variações nas características clínicas, a LT é dividida da seguinte forma: Leishmaniose cutânea localizada (LCL), leishmaniose cutânea difusa (LCDf); leishmaniose cutânea disseminada (LCDs); leishmaniose mucocutânea (LMC); leishmaniose difusa (LD) e leishmaniose difusa disseminada. O diagnóstico pode ser feito por imprint do fragmento da lesão em lâmina para coloração e observação microscópica, cultura e por técnicas moleculares que possuem alvos específicos. O tratamento é feito com medicamentos antiparasitários como a Anfotericina B. Um diagnóstico precoce e menos invasivo a partir de amostras sanguíneas pode ser útil em vez das biópsias das lesões que podem causar um certo incomodo ao paciente. Portanto a PCR é fundamental na detecção e quantificação da carga parasitária. A quantificação da carga parasitária é uma estratégia de monitoramento da doença antes e durante o tratamento dos pacientes baseados nas condições diagnóstica desse método. Objetivos: Padronizar a cPCR e qPCR utilizando o alvo 18s rDNA; determinar a sensibilidade da técnica qPCR com o alvo 18s rDNA em amostras de sangue e tecido de pacientes com suspeita de leishmaniose cutânea e mucocutânea; avaliar a sensibilidade das cPCR em amostras de sangue e tecido com os alvos kDNA e 18s rDNA; avaliar a sensibilidade da qPCR in house com o alvo 18s rDNA em paralelo com o kit comercial da Viasure. Metodologia: O projeto teve início após aprovação da Comissão de Ética para Análise de Projetos de Pesquisa (CAPPesq). Foram utilizadas amostras do ambulatório de Leishmanioses da Divisão de Clínica de Moléstias Infecciosas do Hospital das Clínicas da Faculdade de Medicina da Universidade de São Paulo e do Centro de Pesquisas em Doenças infecciosas e Parasitárias do Hospital Universitário Clemente Faria, localizado em Montes Claros (MG). O número de pacientes incluídos no projeto foi um total de 46 (n=46) dos quais foram coletados dois tipos de amostras, pareadas e não pareadas; uma de sangue periférico em tubos com EDTA, biópsias cutâneas ou mucocutâneas. Essas amostras foram submetidas aos ensaios de cPCR e PCR Real-Time Sybr Green e posteriormente armazenadas no BIOBANCO do Instituto de Medicina Tropical. Foram descritos os resultados das padronizações para cada diluição com uso de médias, desvio padrão (DP) e coeficiente de variação (CV); os sexos dos pacientes foram descritos com uso de frequências absolutas e relativas e as idades e número de lesões foram descritos com uso de medidas resumo (média, desvio padrão, mediana e quartis). Os resultados dos Cts das amostras dos pacientes foram descritos com uso de medidas resumo e comparados entre cada tipo de amostra com uso de equações de estimação generalizadas (EEG) com distribuição normal e função de ligação identidade, assumindo matriz de correlações permutável entre as amostras (McCullagh e Nelder, 1989). A análise foi seguida de comparações múltiplas de Bonferroni para identificar as diferenças encontradas (Neter, et. al., 1996). Resultados da concordância da qPCR com o alvo 18s rDNA com os três tipos de amostras, positivas e negativas, em relação à triagem foi de 65,7% no sangue, 24,4% no sangue-guanidina e tecido 43,2%. Já no que diz respeito à sensibilidade, as amostras de sangue apresentaram um melhor percentual (69,2%) em relação ao tecido (50%) e sangue-guanidina (31,3%). Quanto aos verdadeiros positivos (VPP), as amostras de tecido apresentaram um percentual de probabilidade dos indivíduos estarem doentes de 87,5%, enquanto no sangue foi de 78,3%. Conclui-se então que o alvo 18s rDNA é um marcador eficaz com alta sensibilidade na detecção em sangue periférico, podendo ser utilizado tanto para pesquisa como para diagnósticoIntroduction: American cutaneous leishmaniasis (ATL), an infectious, non-contagious, vector-borne disease with a heteroxenic cycle, is caused by a flagellated protozoan belonging to the genus Leishmania, which infects the skin and mucous membranes. The parasite has two evolutionary forms: promastigote, which is the flagellated form, and amastigote, which is the intracellular aflagellate form. Its reservoirs are marsupials, anteaters, canines, rodents, and primates. The vector of the disease is the insect of the genus Lutzomyia, known as the sandfly. The disease encompasses a spectrum of clinical variations, which depend on the species of Leishmania that is causing the infection, the individual\'s immune system, and epidemiological factors. The variations in clinical characteristics of TL are divided as follows: localized leishmaniasis only (LCL); manifestly diffuse leishmaniasis (LCDf); disseminated leishmaniasis (LCDs); mucocutaneous leishmaniasis (LMC); diffuse leishmaniasis (LD) and disseminated diffuse leishmaniasis. Diagnosis can be made by printing the lesion fragment on a slide for staining and microscopic observation, culture and by molecular techniques that have specific targets. Treatment is done with antiparasitic drugs such as Amphotericin B. An early and less invasive diagnosis from blood samples can be useful instead of lesion biopsies that can cause some discomfort to the patient. Therefore, PCR is essential in the detection and quantification of the parasite load. Quantification of the parasite load is a strategy for monitoring the disease before and during patient treatment based on the diagnostic conditions of this method. Objectives: To standardize cPCR and qPCR using the 18s rDNA target; determine the sensitivity of the qPCR technique with the 18s rDNA target in blood and tissue samples from patients with suspected detected and mucocutaneous leishmaniasis; to evaluate the sensitivity of cPCR in blood and tissue samples with kDNA and 18s rDNA targets; to evaluate the sensitivity of in-house qPCR with the 18s rDNA target in parallel with the commercial kit from Viasure. Methodology: The project began after approval by the Ethics Committee for Analysis of Research Projects (CAPPesq). Samples from the Leishmaniasis outpatient clinic of the Infectious Diseases Clinic Division of the Hospital das Clínicas of the Faculty of Medicine of the University of São Paulo and from the Research Center for Infectious and Parasitic Diseases of the Clemente Faria University Hospital, located in Montes Claros (MG) were used. The number of patients included in the project was a total of 46 (n = 46) of which two types of samples were found, paired and unpaired: one of peripheral blood in tubes with EDTA, detected or mucocutaneous biopsies. These samples were subjected to cPCR and Sybr Green Real-Time PCR assays and subsequently stored in the BIOBANK of the Institute of Tropical Medicine. The results of the standardizations for each dilution were described using means, standard deviation (SD) and coefficient of variation (CV); the sexes of the patients were described using absolute and relative frequencies and the ages and number of lesions were described using abstract measures (mean, standard deviation, median and quartiles). The Cts results of the patient samples were described using abstract measures and compared between each type of sample using specific specification equations (EEG) with normal distribution and identity link function, requiring an exchangeable correlation matrix between the samples (McCullagh and Nelder, 1989), an analysis was followed by Bonferroni multiple comparisons to identify the differences discovered (Neter, et. al., 1996). Results of qPCR agreement with the 18s rDNA target with the three types of samples, positive and negative, in relation to screening were 65.7% without blood, 24.4% without blood-guanidine and tissue 43.2%. Regarding sensitivity, blood samples obtained better percentage (69.2%) in relation to tissue (50%) and blood-guanidine (31.3%). As for true positives (PPV), tissue samples presented a probability percentage of individuals being sick of 87.5%, while in blood it was 78.3%. It is therefore concluded that the 18s rDNA target is an effective marker with high sensitivity in detection in peripheral blood, and can be used for both research and diagnosisBiblioteca Digitais de Teses e Dissertações da USPAmato, Valdir SabbagaSouza, Regina Maia deCastanheira, Gabriel Victor2024-12-10info:eu-repo/semantics/publishedVersioninfo:eu-repo/semantics/masterThesisapplication/pdfhttps://www.teses.usp.br/teses/disponiveis/5/5134/tde-01072025-145625/reponame:Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da USPinstname:Universidade de São Paulo (USP)instacron:USPLiberar o conteúdo para acesso público.info:eu-repo/semantics/openAccesspor2025-07-10T15:28:02Zoai:teses.usp.br:tde-01072025-145625Biblioteca Digital de Teses e Dissertaçõeshttp://www.teses.usp.br/PUBhttp://www.teses.usp.br/cgi-bin/mtd2br.plvirginia@if.usp.br|| atendimento@aguia.usp.br||virginia@if.usp.bropendoar:27212025-07-10T15:28:02Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da USP - Universidade de São Paulo (USP)false
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