Implantação da plataforma CRISPR/Cas9 em micobactérias para o desenvolvimento de novas vacinas e diagnósticos.

Detalhes bibliográficos
Ano de defesa: 2024
Autor(a) principal: Moraes, Luana
Orientador(a): Não Informado pela instituição
Banca de defesa: Não Informado pela instituição
Tipo de documento: Tese
Tipo de acesso: Acesso aberto
Idioma: por
Instituição de defesa: Biblioteca Digitais de Teses e Dissertações da USP
Programa de Pós-Graduação: Não Informado pela instituição
Departamento: Não Informado pela instituição
País: Não Informado pela instituição
Palavras-chave em Português:
Link de acesso: https://www.teses.usp.br/teses/disponiveis/87/87131/tde-02052025-093142/
Resumo: A tuberculose (TB) é um sério problema de saúde pública mundial, e gera grandes impactos na economia pecuária de bovinos (bTB). Em humanos, o principal agente etiológico é o Mycobacterium tuberculosis (Mtb) e em bovinos, o M. bovis (Mb). A única vacina atualmente licenciada contra a TB é a BCG, uma vacina viva atenuada de Mb que é altamente eficaz na proteção contra as formas severas da TB em crianças, sendo a vacina mais amplamente usada no mundo. No entanto, a proteção contra a tuberculose pulmonar em adultos é muito variável e, em bovinos, não é aplicável pela baixa eficiência somada ao risco de interferir nos testes diagnósticos usados no controle da bTB. A ferramenta de edição genética, CRISPR/Cas9 é uma ferramenta biotecnológica de edição de genomas que foi vastamente aplicada em diversos organismos com bastante sucesso e pode ser uma alternativa para o melhoramento da própria BCG (BCG recombinante - rBCG). Com isso, propusemos o estabelecimento da ferramenta CRISPR/Cas9 em BCG visando o desenvolvimento de uma vacina contra tuberculose e sua compatibilidade com testes diagnósticos para viabilizar o uso em bovinos. Para tal, vetores micobacterianos contendo o sistema CRISPR/Cas9 foram gerados. Quando utilizados para a deleção do gene lysA, observamos eficiências na geração de mutações em 25 e 5% para M. smegmatis e BCG, respectivamente. O BCG mutante para lysA (ΔlysA) serviu como plataforma para expressão do adjuvante LTAK63 (uma versão da subunidade A da toxina LT de E. coli detoxificada geneticamente), e foi denominado rBCGΔLTAK63. Camundongos imunizados com rBCGΔLTAK63 apresentaram maior proteção contra a infecção por Mtb e melhor resolução do quadro inflamatório nos pulmões. Quando aplicamos a ferramenta para deleção de genes mpb70, mpb83, espA, espC e esxS em BCG, envolvidos no diagnóstico para diferenciar animais infectados dos vacinados (DIVA), obtivemos sucesso de mutações em quatro dos cinco genes com eficiências de: mpb70 = 75%, mpb83 = 20%, espC = 4,3% e esxS = 15,7%. Este estudo demonstra o estabelecimento e aplicação eficaz da tecnologia CRISPR/Cas9 em BCG visando o desenvolvimento de uma vacina melhorada contra a tuberculose e, compatível com o diagnóstico em bovinos. Uma única vacina para controle tanto da TB humana quanto da bTB traria benefícios tanto para a saúde pública quanto ganhos econômicos.
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No entanto, a proteção contra a tuberculose pulmonar em adultos é muito variável e, em bovinos, não é aplicável pela baixa eficiência somada ao risco de interferir nos testes diagnósticos usados no controle da bTB. A ferramenta de edição genética, CRISPR/Cas9 é uma ferramenta biotecnológica de edição de genomas que foi vastamente aplicada em diversos organismos com bastante sucesso e pode ser uma alternativa para o melhoramento da própria BCG (BCG recombinante - rBCG). Com isso, propusemos o estabelecimento da ferramenta CRISPR/Cas9 em BCG visando o desenvolvimento de uma vacina contra tuberculose e sua compatibilidade com testes diagnósticos para viabilizar o uso em bovinos. Para tal, vetores micobacterianos contendo o sistema CRISPR/Cas9 foram gerados. Quando utilizados para a deleção do gene lysA, observamos eficiências na geração de mutações em 25 e 5% para M. smegmatis e BCG, respectivamente. O BCG mutante para lysA (ΔlysA) serviu como plataforma para expressão do adjuvante LTAK63 (uma versão da subunidade A da toxina LT de E. coli detoxificada geneticamente), e foi denominado rBCGΔLTAK63. Camundongos imunizados com rBCGΔLTAK63 apresentaram maior proteção contra a infecção por Mtb e melhor resolução do quadro inflamatório nos pulmões. Quando aplicamos a ferramenta para deleção de genes mpb70, mpb83, espA, espC e esxS em BCG, envolvidos no diagnóstico para diferenciar animais infectados dos vacinados (DIVA), obtivemos sucesso de mutações em quatro dos cinco genes com eficiências de: mpb70 = 75%, mpb83 = 20%, espC = 4,3% e esxS = 15,7%. Este estudo demonstra o estabelecimento e aplicação eficaz da tecnologia CRISPR/Cas9 em BCG visando o desenvolvimento de uma vacina melhorada contra a tuberculose e, compatível com o diagnóstico em bovinos. Uma única vacina para controle tanto da TB humana quanto da bTB traria benefícios tanto para a saúde pública quanto ganhos econômicos.Tuberculosis (TB) is a serious global public health issue and has a significant impact on the livestock economy, particularly in bovine tuberculosis (bTB). In humans, the primary causative agent is Mycobacterium tuberculosis (Mtb), while in cattle, it is M. bovis (Mb). The only currently licensed vaccine against TB is BCG, a live-attenuated vaccine derived from Mb, effective in protecting against severe forms of TB in children and widely used worldwide. However, BCG\'s protection against pulmonar tuberculosis in adults is highly variable, whilst it is not applicable in cattle as it interferes with diagnostic tests required for bTB control. CRISPR/Cas9 is a powerful gene editing tool successfully applied in many organisms and could potentially be used to improve the efficacy of BCG (recombinant BCG- rBCG). We proposed establishing CRISPR/Cas9 in BCG to develop an improved TB vaccine and, compatible with diagnostic tests for use in cattle. To achieve this, mycobacterial vectors containing the CRISPR/Cas9 system were generated. When used for lysA gene deletion, mutations were observed in both M. smegmatis (25%) and BCG (5%). The mutant BCG strain (ΔlysA) was used to express the adjuvant LTAK63 (genetically detoxified subunit A of E. coli thermolabile toxin) thus generating rBCGΔ-LTAK63. Mice immunized with rBCGΔ-LTAK63 showed increased protection against Mtb challenge and improved resolution of the inflammatory process. Application of CRISPR/Cas9 to nocaute mpb70, mpb83, espA, espC, and esxS genes in BCG to enable its compatibility with a diagnostic test to differentiate infected from vaccinated animals (DIVA), successful mutations were achieved in four of the five planned genes: mpb70 (75%), mpb83 (20%), espC (4.3%), and esxS (15.7%). This study demonstrates the establishment and effective application of CRISPR/Cas9 in developing an improved vaccine against tuberculosis, compatible with the diagnostic test in bovines. A single vaccine to control both human TB and bTB would greatly benefit public health as well as the economy.Biblioteca Digitais de Teses e Dissertações da USPKanno, Alex IssamuLeite, Luciana Cezar de CerqueiraMoraes, Luana2024-08-30info:eu-repo/semantics/publishedVersioninfo:eu-repo/semantics/doctoralThesisapplication/pdfhttps://www.teses.usp.br/teses/disponiveis/87/87131/tde-02052025-093142/reponame:Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da USPinstname:Universidade de São Paulo (USP)instacron:USPLiberar o conteúdo para acesso público.info:eu-repo/semantics/openAccesspor2025-05-05T13:22:02Zoai:teses.usp.br:tde-02052025-093142Biblioteca Digital de Teses e Dissertaçõeshttp://www.teses.usp.br/PUBhttp://www.teses.usp.br/cgi-bin/mtd2br.plvirginia@if.usp.br|| atendimento@aguia.usp.br||virginia@if.usp.bropendoar:27212025-05-05T13:22:02Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da USP - Universidade de São Paulo (USP)false
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